Efecto de tres tipos de presas vivas en la larvicultura de bagre blanco (Sorubim cuspicaudus)

Efecto de tres tipos de presas vivas en la larvicultura de bagre blanco (Sorubim cuspicaudus)

RESUMEN

Objetivo. Evaluar el efecto de diferentes presas vivas en la larvicultura de bagre blanco (Sorubim cuspicaudus). Materiales y métodos. Al inicio de la alimentación exógena de Sorubim cuspicaudus, se ofreció zooplancton producido en mesocosmos (T1), zooplancton silvestre (T2) y nauplios de Artemia (T3), en concentración de 10.000 zoop/L, dos veces al día, durante seis días. Se utilizaron 18 acuarios de cinco litros de volumen útil, con densidad de 25 Larvas/L, seis réplicas por tratamiento en un diseño al azar. Se estimaron la ganancia en peso (Gp) y longitud (Gl), tasa de crecimiento específico (G), sobrevivencia (S), resistencia al estrés (Re), mortalidad acumulada (Ma) y mortalidad por canibalismo (Mc). Resultados. Las larvas alimentadas con mesocosmos presentaron la mayor sobrevivencia (81.3±15.9%); aunque el mejor crecimiento lo presentaron las larvas alimentadas con zooplancton silvestre (T2) las cuales presentaron la mayor mortalidad (42.0±10.7%) y la menor resistencia al estrés (30.0±33.0%). El canibalismo se observó en todos los tratamientos, oscilando entre 4.0 (T2) y 14.3% (T1) sin diferencias significativas entre estos valores (p>0.05). Conclusiones. El uso de zooplancton producido bajo condiciones controladas permitió una alta sobrevivencia, adecuado desempeño y resistencia de las larvas, perfilándose como alternativa viable en la primera alimentación de bagre blanco.

1. Prieto MJ, Atencio VJ. Zooplancton y mesocosmo en la larvicultura de peces neotropicales. Rev Bras Zootecn 2008; 37(Supl):1-17.
3. Prieto M, Casta-o F, Sierra J, Logato P, Botero J. Alimento vivo en la larvicultura de peces marinos. Copépodos y mesocosmos. Rev MVZ Córdoba 2006a; 11(1):30-36.
5. Prieto MJ, Moraes G, Okamura D, Logato PV, Araujo FG. Tipo de alimento, sobrevivência e desempenho inicial de Pós-larvas de Pacu (Piaractus mesopotamicus). Cienc Agrotec 2006c; 30(5):1002-1007. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542006000500026
7. Espinosa JA. Estandarización de un protocolo para la crioconservación de semen de bagre blanco Sorubim cuspicaudus. [Tesis de Maestría], Montería, Colombia: Universidad de Córdoba, Facultad de Ciencias Básicas, Departamento de Química; 2012.
9. Atencio-García V. Producción de alevinos de especies nativas. Rev MVZ Córdoba 2001; 6(1):9-14.
11. Kerguelén-Durango E, Atencio-García V, Wadnipar L, Narváez A. Manejo de la primera alimentación del bocachico (Prochilodus magdalenae). Rev MVZ Córdoba 2003; 8(1):254-260.
13. Martínez JL, Ortiz ME, Prieto MJ. Estandarización de un sistema de mesocosmos: patrones de coexistencia. Rev Colomb Cienc Pecu 2008; 21(3):480-481.
15. Prieto MJ, De la Cruz L, Morales MA. Cultivo experimental del cladocero Moina sp usando como alimento Ankistrodesmus sp y Saccharomyces cereviseae. Revista MVZ Córdoba 2006b; 11(1):705-714.
17. SAS/STAT. SAS User's guide: Product documentation. 6.0 ed. Cary (NC): SAS Institute, Inc.; 2012.
19. Mojica HO, Rodríguez JA, Orozco CJ. Manual de reproducción y cultivo. El Bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum) INPA (regional oriental). Villavicencio, Meta: INPA-PRONATTA; 2003.
21. Ramirez-Merlano JA, Otero-Paternina AM, Corredor Santamaría W, Medina_Robles VM, Cruz-Casallas PE, Velasco-Santamaría YM. Utilización de organismo vivos como alimentación de larvas de yaque (Leiarius marmoratus) bajo condiciones de laboratorio. Orinoquia 2010; 14(1):45-58.
23. Atencio-García V, Zaniboni-Filho E, Pardo-Carrasco S, Arias-Castellanos A. Influência da primeira alimentação na larvicultura e alevinagem do yamú Brycon siebenthalae. Acta Sci Anim Sci 2003; 25(1):61-72. http://dx.doi.org/10.4025/actascianimsci.v25i1.2092
25. Marciales-Caro LJ, Diaz-Olarte JJ, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Evaluación del crecimiento y sobrevivencia de larvas de bagre rayado Pseudopatystoma fasciatum (Linneaus, 1766) alimentadas con alimento vivo natural y enriquecido con ácidos grasos. Rev Colomb Cienc Pecu 2010; 23:308-316.
27. Diaz-Olarte JJ, Cruz-Casallas NE, Marciales-Caro LJ, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Efectos de la densidad de siembra y dsiponibilidad de alimento sobre el desarrollo y sobrevivencia de las larvas de Pseudoplatystoma fasciatum. Orinoquia 2009; 13(1):21-30.
29. Nu-ez J, Dugué R, Corcuy Arana N, Duponchelle F, Renno JF, Raynaud T, et al. Induced breeding and larval rearing of Surubí, Pseudoplatystoma fasciatum (Linnaeus, 1766), from the Bolivian Amazon. Aquacult Res 2008; 39(7):764-776. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.01928.x
31. Gaviria S, Aranguren N. Especies de vida libre de la subclase Copepoda (Arthropoda, Crustacea) en aguas continentales de Colombia. Biota Colombiana 2007; 8(1):53-68.
33. Atencio-Garcia VJ, Zaniboni-Filho E. El canibalismo en la larvicultura de peces. Rev MVZ Córdoba 2006; 11(1):9-19.