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Presencia de Spiroplasma penaei en plancton, bentos y fauna acompañante en fincas camaroneras de Colombia

Presence of Spiroplasma penaei in plankton, benthos and fauna in shrimps farms of Colombia



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Cómo citar
Altamiranda M, J., Salazar V, M., & Briñez R, B. (2011). Presencia de Spiroplasma penaei en plancton, bentos y fauna acompañante en fincas camaroneras de Colombia. Revista MVZ Córdoba, 16(2), 2576-2583. https://doi.org/10.21897/rmvz.1030

Dimensions
PlumX
José Altamiranda M
Marcela Salazar V
Boris Briñez R

 

 Objetivo. Determinar la presencia de Spiroplasma penaei en el plancton, bentos y fauna acompañante en 2 fincas comerciales de camarones. Materiales y métodos. Fueron colectadas 200 muestras para identificación de lesiones características de Spiroplasma, a través de la técnica de histología, mientras que para la técnica de PCR se tomaron 326 muestras de plancton, bentos y fauna acompañante. Las muestras colectadas fueron preservadas en tubos estériles con etanol al 95% para análisis de PCR y en solución Davidson para análisis histológicos. Resultados. En los muestreos realizados en las dos fincas camaroneras fue detectada la presencia de Spiroplasma en una muestra de un representante de los dípteros (mosca de agua) a través de la técnica de PCR en tiempo real, el cual arrojo una Tm=84, similar a la del control positivo de Spiroplasma utilizado. Esta muestra fue secuenciada y comparada con secuencias de bacterias almacenadas en el banco de datos GenBank usando el algoritmo BLAST, encontrando 100% de homología con un fragmento de los genes ribosomales 16S de la bacteria Spiroplasma penaei. Conclusiones. La mosca de agua es portadora de Spiroplasma penaei, sin embargo no se puede afirmar que este organismo sea el transmisor de la infección, por lo que se recomienda realizar ensayos de tipo experimental con moscas de agua infectadas con Spiroplasma penaei, en camarones libres de patógenos, para evaluar si en realidad es el vector de infección.


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  1. FAO (Food & Agriculture Organization of the United Nations) (2002). The State of World Fisheries and Aquaculture (SOFIA). Rome: FAO. Kautsky N, Ronnback P, Tedengren M, Troell M. Ecosystem perspectives on management of disease in shrimp pond farming. Aquaculture 2000; 191:145–161.
  2. Rosemberry B. World shrimp farming. Annual Report Shrimp News International. San Diego: World Aquaculture Society; 2001.
  3. Kautsky N, Ronnback P, Tedengren M, Troell M. Ecosystem perspectives on management of disease in shrimp pond farming. Aquaculture 2000; 191:145–161. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(00)00424-5
  4. Aguirre GG and Valle AF. Infectious disease in shrimp species with aquaculture potential. Recent Res Dev Microbiol 2000; 4:333-348.
  5. Martin GG, Rubin N, Swanson E. Vibrio parahaemolyticus and V. harveyi cause detachment of the epithelium from the midgut trunk of the penaeid shrimp Sicyonia ingenti. Dis Aquat Organ 2004; 60: 21-29 https://doi.org/10.3354/dao060021
  6. Yokomi R, Mello AFS, Saponari M and Fletcher J. Polymerase chain reaction-based detection of Spiroplasma citri associated with citrus stubborn disease. Plant Dis 2008; 92:253-260. https://doi.org/10.1094/PDIS-92-2-0253
  7. Wang W, Rong L, Gu W, Du K, Chen J. Study on experimental infections of Spiroplasma from the Chinese mitten crab in crayfish, mice and embryonated chikens. Res Microbiol 2003; 154: 677-680. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2003.08.004
  8. Wang W, Chen J, Du K, Xu Z. Morphology of spiroplasmas in the Chinese mitten crab Eriocheir sinensis associated with tremor disease. Res Microbiol 2004; 155:630–635. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2004.04.010
  9. Wang W, Gu ZF. Rickettsia-like organism associated with tremor disease and mortality of the Chinese mitten crab Eriocheir sinensis. Dis Aquat Org 2002; 48: 149–153. https://doi.org/10.3354/dao048149
  10. Zbinden M, Cambon-Bonavita MA. Occurrence of Deferribacterales and Entomoplasmatales in the deep-sea alvinocarid shrimp Rimicaris exoculata gut. FEMS Microbiol Ecol 2003; 46: 23–30. https://doi.org/10.1016/S0168-6496(03)00176-4
  11. Nunan LM, Pantoja CR, Salazar M, Aranguren F, Lightner DV. Characterization and molecular methods for detection of a novel Spiroplasma pathogenic to Penaeus vannamei. Dis Aquat Organ 2004; 62: 255–264. https://doi.org/10.3354/dao062255
  12. Wang W, Gu W, Ding Z, Ren Y, Chen J, Hou Y. A novel Spiroplasma pathogen causing systemic infection in the crayfish Procambarus clarkii (Crustacea: Decapod), in China. FEMS Microbiol Lett 2005; 249: 131–137. https://doi.org/10.1016/j.femsle.2005.06.005
  13. Nunan LM, Lightner DV, Oduori MA, Gasparich GE. Spiroplasma penaei sp. nov., associated with mortalities in Penaeus vannamei, Pacific white shrimp. Int J Syst Evol Microbiol 2005; 55: 2317–2322. https://doi.org/10.1099/ijs.0.63555-0
  14. Delgado JG, Poveda CM, Cahu C. Digestive enzyme activity and food ingesta in juvenile shrimp Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) as a function of body weight. Aquac Res 2003; 34:1403-1411 https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2003.00959.x
  15. Otoshi CA, Montgomery AD, Look AM and Moss SM. Effects of diet and water source on the nursery production of pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. J World Aquac Soc 2001; 32: 243-249 https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2001.tb01102.x
  16. Chena R, Sugawara H, Koike T, Lopez R, Gibson TJ, Higgins DG and Thompson JD. Multiple sequence alignment with the Clustal series of programs. Nucleic Acids Res 2003; 31: 3497-3500 https://doi.org/10.1093/nar/gkg500
  17. Hall TA. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp Ser 1999; 41: 95-98.
  18. Altschul SF, Gish W, Miller W, Myers EW, Lipman DJ. Basic local alignment search tool. J Mol Biol 1990; 215: 403-10. https://doi.org/10.1016/S0022-2836(05)80360-2
  19. Gasparich GE, Whitcomb RF, Dodge D, French FE, Glass, J, Williamson DL. The genus Spiroplasma and its nonhelical descendants: phylogenetic classification, correlation with phenotype and roots of the Mycoplasma micoydes clade. Int J Syst Evol Microbiol 2004; 54: 893-918. https://doi.org/10.1099/ijs.0.02688-0
  20. Costa J. Real time PCR. Enferm Infecc Microbiol Clin 2004; 22: 299-305. https://doi.org/10.1016/S0213-005X(04)73092-X
  21. Erali M and Wittwer C. High resolution melting analysis for gene scanning. Methods 2010; 50:250-261 https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2010.01.013
  22. Philip B and Wittwer C. Homogeneous amplification and variant detection by fluorescent hybridization probes. Clin Chem 2000; 46:147-148
  23. Fletcher J, Melcher V, Wayadende A. The Phytopathogenic Spiroplasmas. In: Dworkin M, Falkow S, Rosenberg E, Schleifer K, Stackebrandt E. The Prokaryotes. New York. Springer; 2006. p 905-947. https://doi.org/10.1007/0-387-30744-3_30
  24. Barros TS, Davis RE, Resende RO. Design of polymerase chain reaction for specific detection of corn stunt spiroplasma. Plant Diseases 2001; 85: 475-480. https://doi.org/10.1094/PDIS.2001.85.5.475
  25. Seemüller E, Garnier M and Schneider B. Mycoplasmas of plants and insects. In: Razin S and Herrmann R. Molecular biology and pathogenicity of mycoplasmas. New York: Kluwer Academic/Plenum Publishers; 2002. p 91-115 https://doi.org/10.1007/0-306-47606-1_5
  26. Summers CG and Stapleton JJ. Management of corn leafhopper (Homoptera: Cicadellidae) and corn stunt disease in sweet corn using reflective mulch. J Econ Entomol 2002; 95:325-330 https://doi.org/10.1603/0022-0493-95.2.325

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