Histopatologia de la infección experimental de ovejas sin lana Ovis aries por Neospora caninum

Histopathology of experimental infection of sheep sheep Ovis aries by Neospora caninum

Ovejas sin lana en diferentes estados reproductivos fueron inoculadas por vía intravenosa con taquizoítos de N. caninum muestra «NC-beef» con el fin de estudiar la patofisiología de la enfermedad en estos animales y verificar la posibilidad de ser usados como modelo experimental de neosporosis bovina. Se utilizaron cinco ovejas gestantes (una con 15 días, dos con 30 días, dos con 90 días), tres no gestantes y dos con 10 días posparto. Los animales eran serologicamente negativos para N.caninum y T. gondii. Dos ovejas gestantes, no inoculadas, fueron utilizadas como control negativo. Los corderos necropsiados, nacidos de ovejas inoculadas antes o durante la gestación presentaron alteraciones histopatológicas en diferentes tejidos, siendo las más severas observadas en el sistema nervioso central, caracterizadas por la presencia de formas quísticas del parásito asociadas con infiltrado inflamatorio predominantemente mononuclear, áreas de necrosis y en algunos casos presencia de calcificación. Los corderos nacidos de ovejas inoculadas 10 días después del parto no presentaron signos clínicos de la enfermedad ni anticuerpos contra o parásito y a la necropsia no presentaron lesiones en ninguno de los tejidos analizados. Un cordero nacido de oveja no inoculada no presentó alteraciones microscópicas en ninguno de los tejidos analizados.

1. Anderson ML, Andrianarivo, AG, Conrad P.A. Animal Reproduction Science, 2000; 60: 417-431. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00117-2
3. Buxton D, Maley SW, Thomson KM, Trees AJ, Innes E.A. Journal of Comparative Pathology, 1997; 117: 1 - 16. https://doi.org/10.1016/S0021-9975(97)80062-X
5. Buxton D, Maley SW, Wright S, Thomson KM, Rae AG, Innes E.A. Journal of Comparative Pathology, 1998; 118: 267 - 279. https://doi.org/10.1016/S0021-9975(07)80003-X
7. Buxton D, Wright S, Maley SW, Rae AG, Lundén A, Innes E.A. Parasite Immunology, 2001; 23: 85 - 91. https://doi.org/10.1046/j.1365-3024.2001.00362.x
9. Dubey J.P. And Lindsay D.S. Veterinary Parasitology, 1996; 67: 1 - 59. https://doi.org/10.1016/S0304-4017(96)01035-7
11. Dubey J.P. Veterinary Parasitology, 1999;84, p.349 - 367. https://doi.org/10.1016/S0304-4017(99)00044-8
13. Dubey JP, Hartley WJ, Lindsay D.S. And Topper M.J. Journal of Parasitology, 1990;76, 127 - 130. https://doi.org/10.2307/3282640
15. Jolley WR, Mcallister MM, Mcguire AM, Wills R.A. Veterinary Parasitology,1999; 82, 251 - 257. https://doi.org/10.1016/S0304-4017(99)00017-5
17. Luna L.G. Manual of Histologic Staining Methods of the Armed Forces Intitute of Pathology. 3a ed. Washington D.C. McGraw - Hill. 1968, 1 - 37.
19. Mcallister MM, Mcguire AM, Jolley WR, Lindsay DS, Trees AJ, Stobart R.H. Veterinary Pathology, 1996; 33, 647 - 655. https://doi.org/10.1177/030098589603300603
21. Prophet EB, Mills B, Arrington JB, E Sobin L.H. Laboratory Methods in Histotechnology Armed Forces Institute of Pathology. Washington. 1992, 274.