Primer reporte de infección natural de Nematodirus filicollis en un ovino del trópico sub-húmedo mexicano

First report of Nematodirus filicollis natural infection in a sheep from the mexican sub-humid tropics

Objetivo. El presente estudio tiene por objetivo reportar por primera vez el caso de un ovino que adquirió la infección natural con Nematodirus filicollis en condiciones de clima tropical sub-húmedo. Materiales y métodos. Se tomó una muestra de heces que fue procesada para identificar y cuantificar la excreción de huevos de nematodos por gramo de heces (h/gh) mediante las pruebas de Flotación Centrifugada y McMaster. Asimismo, se realizó un cultivo de larvas mediante la prueba de Corticelli-Lai. Resultados. El ovino presentó una nematodiasis mixta por Trichuris spp. (100 h/gh), Nematodirus spp. (100 h/gh) y otros nematodos del orden strongylida (1500 h/gh). El tamaño de los huevos del Nematodirus fue de 202±3 µ de largo y 97±2 µ de ancho. En el cultivo de larvas se identificaron los géneros Haemonchus, Trichostrongylus, Oesophagostomum y Nematodirus. La longitud promedio de las larvas de Nematodirus fue de 955±8.0 µ y ancho de 28±0.5 µ, mientras que la longitud promedio de la cola de la vaina fue de 233.4±41.6 µ. Conclusiones. Con base en las dimensiones de las larvas y sus características morfológicas se reporta que la infección del ovino fue por Nematodirus filicollis. Se concluye que N. filicollis es capaz de sobrevivir en las condiciones del clima tropical sub-húmedo en México y se reporta por primera vez el caso de un ovino que adquirió la infección natural con este nematodo.

1. Oliver AMB, Leathwick DM, Pomroy WE. A survey of the prevalence of Nematodirus spathiger and N. filicollis on farms in the North and South Islands of New Zealand. New Zealand Vet J 2014; 62(5):286-289. https://doi.org/10.1080/00480169.2014.920700
3. Nadler SA, Hoberg EP, Hudspeth DS, Rickard LG. Relationships of Nematodirus species and Nematodirus battus isolates (Nematoda: Trichostrongyloidea) based on nuclear ribosomal DNA sequences. J Parasitol 2000; 86(3):588-601. https://doi.org/10.2307/3284877
4. Van Dijk J, Morgan ER. The influence of temperature on the development, hatching and survival of Nematodirus battus larvae. Parasitol 2008; 135(2): 269-283. https://doi.org/10.1017/S0031182007003812
6. Hoberg EP. Coevolution and biogeography among nematodirinae (Nematoda: Trichostrongylina) Lagomorpha and Artiodactyla (Mammalia): Exploring determinants of history and structure for the northern fauna across the Holarctic. J Parasitol 2005; 91:358–369. https://doi.org/10.1645/GE-3466
8. Langrová I, Makovcová K, Vadlejch J, Jankovská I, Petrtýl M, Fechtner J, et al. Arrested development of sheep strongyles: onset and resumption under field conditions of Central Europe. Parasitol Res 2008; 103:387-392. https://doi.org/10.1007/s00436-008-0984-6
10. Morgan ER, Van Dijk J. Climate and the epidemiology of gastrointestinal nematode infections of sheep in Europe. Vet Parasitol 2012; 189:8-14. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2012.03.028
12. Torina A, Dara S, Marino AM, Sparagano OA, Vitale F, Reale S, et al. Study of gastrointestinal nematodes in Sicilian sheep and goats. Ann NY Acad Sci 2004; 1026:187-194. https://doi.org/10.1196/annals.1307.028
14. Bowman, DD, Lynn RC, Eberhard ML. Georgis' Parasitology for Veterinarians, 8th ed. Missouri, Saunders; 2003.
16. Montalvo-Aguilar X, López-Arellano ME, Vázquez- Prats V, Liébano-Hernández E, Mendoza-de-Gives P. Resistencia antihelmíntica de nematodos gastroentéricos en ovinos a febendazol e ivermectina en la región noroeste del estado de Tlaxcala. Téc Pecu Méx 2006; 44(1):81-90.
18. Vázquez PVM. Aspectos epizootiológicos de las verminosis gastroentéricas en ovinos en clima A(f)c. [Tesis de Maestría] Ciudad de México D. F., México. Universidad Autónoma de México, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia; Departamento de Medicina; 1985.
20. Sánchez SG, Quiroz HH. Frecuencia de parásitos gastrointestinales, pulmonares y hepáticos en ovinos de la Magdalena Soltepec, Tlaxcala, México. Vet Méx 1993; 24(3):195-198.
22. INEGI (Instituto Nacional de Estadística, Geografía e Información). Anuario estadístico y geográfico de Yucatán. 2015. México. http://www.datatur.sectur.gob.mx/ITxEF_Docs/YUC_ANUARIO_PDF15.pdf
24. Bautista F, Frausto O, Ihi T, Aguilar Y. Actualización del mapa de suelos del Estado de Yucatán México: enfoque geomorfopedológico y WRB. Ecosist Rec Agrop 2015; 2(6):303-315.
26. Rodríguez-Vivas RI, Cob-Galera LA. Técnicas diagnósticas en parasitología veterinaria. Segunda edición. Universidad Autónoma de Yucatán. Mérida, México 2005.
28. Van Dijk J, Morgan ER. Variation in the hatching behaviour of Nematodirus battus: Polymorphic bet hedging? Int J Parasitol 2010; 40(6):675-681. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2009.11.002
30. Gethings OJ, Rose H, Mitchell S, Van Dijk J, Morgan ER. Asynchrony in host and parasite phenology may decrease disease risk in livestock under climate warming: Nematodirus battus in lambs as a case study. Parasitol 2015; 142:1306-1317. https://doi.org/10.1017/S0031182015000633
32. Torres-Acosta JF, Mendoza-de-Gives P, Aguilar-Caballero AJ, Cuéllar-Ordaz JA. Anthelmintic resistance in sheep farms: Update of the situation in the American continent. Vet Parasitol 2012; 189(1):89-96. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2012.03.037