Involución uterina en vacas Holstein en la provincia El Carchi, Ecuador

Uterine Involution in Hosltein cows in the province of Carchi, Ecuador

Objetivo. Evaluar la involución uterina en  vacas Holstein, en las condiciones de producción de la ganadería bovina lechera en la provincia El Carchi, Ecuador. Materiales y métodos. Se seleccionaron 60 vacas y se determinó el tiempo para la involución uterina mediante la exploración recto-vaginal, ultrasonografía y la puntuación clínica de la regresión del útero. Se determinaron los estadígrafos descriptivos de cada variable. Se evaluó el efecto de la paridad y la condición corporal (CC) sobre la completa involución uterina mediante un ANOVA multifactorial y la prueba LSD para comparar las medias. Resultados. La involución del útero, sin tomar en cuenta la puntuación clínica ocurrió a los 29.86 ± 7.71 días pero considerando esta notación fue a los 42±0.39 días. La involución uterina ocurrió más temprano (p<0.05) en las vacas con CC al parto ≥ que 3.5 que en las que la tenían < de 3.5. En las vacas de segundo parto fue a los 25.17 ± 1.32 días y se prolongó (p<0.05) en el tercero y cuarto parto. La aparición del folículo dominante y la ovulación ocurrieron a los 16.63 ± 3.83  y 27.76 ± 7.71 días, respectivamente. Conclusiones. La involución clínica del útero considerando el examen recto-vaginal ocurrió en menor tiempo que cuando se evaluó considerando la puntuación clínica. El proceso de involución uterina está iinfluenciado por la paridad y la CC al parto.

1. Zhang J, Deng LX, Zhang HL, Hua GH, Han L, Zhu Y, Meng XJ, Yang LG. Effects of parity on uterine involution and resumption of ovarian activities in postpartum Chinese Holstein dairy cows. J Dairy Sci. 2010; 93(5):1979–1986. https://doi.org/10.3168/jds.2009-2626
3. Nunes ÁC, De PM, Tsuruta SA, Dos RM, Elsen JP. Dinâmica da Involução Uterina no Pós-Parto de vacas da raça Guzerá. Biosc J Uberlandia. 2014; 30(2):847-855.
5. Hajurka J, Macak V, Hura V. Influence of health status of reproductive organs on uterine involution in dairy cows. Bull Vet Pulaway. 2005; 49(1):53-58.
7. Quintela LA, Barrio M, Pe-a AI, Becerra JJ, Cainzos J, Herradón PG, Diaz C. Use of ultrasound in the reproductive management of dairy cattle. Reprod Domestic Anim. 2012; 47(3):34–44. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2012.02032.x
9. Sheldon IM, Willians EJ, Miller Ana, Nash DM, Herath S. Uterine diseases in cattle after parturition. Vet J. 2008; 176(1):115-121. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2007.12.031
11. Vallejo DA, Chaves CA, Astaíza J, Benavides, Carmenza, Jurado Ximena E. Endometritis subclinica diagnosticada mediante cytobrush y comportamiento reproductivo en vacas del municipio de Pupiales, Colombia. Rev Med Vet. 2014; 27(1):111-120 https://doi.org/10.19052/mv.3028
13. INAMHI Instituto nacional de meteorología e hidrografía. [online] Datos meteorológicos de la estación meteorológica de Chalpatan, Carchi, Ecuador. [citado 7 de marzo de 2016].Disponible URL en: http:// www.inamhi.gob.ec.
15. Rodenburg J. Body Condition Scoring of Dairy Cattle. OMAFRA Factsheet. [online] Order No. 92-122, 2004; 414-420. [citado 4 septiembre 2010]. Disponible en URL: http://www.omafra.gov.on.ca/english/livestock/dairy/facts/00-109.htm
17. Cuesta M, Montejo E, Duvergel J. Medicina Interna Veterinaria. 1ra ed. Editorial Félix Varela; La Habana, Cuba; 2007.
19. Hernández, JH. Fisiología clínica de la reproducción de bovinos lecheros. 1ra edición. Editorial Universidad Autónoma de México (UNAM), México; 2012.
21. Domínguez C, Ruiz AZ, Pérez R, Martinez N, Drescher K, Pinto L, Araneda R. Efecto de la condición corporal al parto y del nivel de alimentación sobre la involución uterina, actividad ovárica, pre-ez y la expresión hipotalámica y ovárica de los receptores de leptina en vacas doble propósito. Rev Fac Cs Vet. 2008; 49(1):23-36.
23. Viamonte María I, Fajardo H, Rondón G, Pedroso R. Evaluación clínica de la involución uterina en la hembra bovina de la raza criolla cubana. Ciencia y Tecnología Ganadera. 2012; 6(1):47-51.
25. Drescher K, Roa N, D’Enjoy F, Avellaneda, J. Evaluación ultrasonográfica posparto en vacas primíparas Bos Taurus x Bos indicus (F1) en el trópico. Revista Científica, FCV-LUZ 2014; 24(4):295-304.
27. Guáqueta H, Zambrano J, Jiménez Claudia. Factores que afectan la reactivación ovárica postparto en vacas Holstein, en el trópico alto. Rev MVZ Córdoba. 2014; 19(1):3970-3983.
29. Shrestha HK, Nakao T, Higaki T, Suzuki T, Akita M. Resumption of postpartum ovarian cyclicity in high producing Holstein cows. Theriogenol. 2004; 61(4):637-649. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(03)00233-4
31. Walsh RB, Kelton DF, Duffield TF, Leslie KE, Walton JS, LeBlanc SJ. Prevalence and risk factors for postpartum anovulatory condition in dairy cows. J Dairy Sci. 2007; 90(1):315-324. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(07)72632-2
33. Salas G, Herrera J, Gutiérrez E, Ku-Vera J, Aké-López J. R. Reinicio de la actividad ovárica posparto y concentración plasmática de metabolitos lípidos y progesterona en vacas suplementadas con grasa de sobrepaso. Trop Subtrop Agroecosyt. 2011; 14(2):385–392.
35. Hannan MA, Fuenzalida MJ, Siddiqui MA, Shamsuddin M, Beg, MA, Ginther OJ. Diurnal variation in LH and temporal relationships between oscillations in LH and progesterone during the luteal phase in heifers. Theriogenol. 2010; 74(8):1491-1498. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.06.021
37. Ruíz L, Sandoval R. Involución uterina en el ganado bovino: un nuevo score y su relación con el número de partos y los días en lactación. Spermova. 2013; 3(1):87–88.
39. Statgraphis Centurion Ver. XV.II. Edicion Multilingüe. StatPoint, Inc. Statistical Graphic Corp. Warrenton, Virginia, EEUU; 2006.
41. Quintela LA, García ME, Pe-a AI, Díaz C, Barrio M, Becerra JJ, Herradón PG. Asociación entre el perfil sérico bioquímico y la duración de la involución uterina en hembras bovinas de producción láctea. Arch Zootec. 2003; 52 (200):419-429.
43. Kwaya R. Características del anestro e influencia del destete temporal en vacas mestizas en sistema de producción extensivo. Flor de Sumbe. Angola. [Tesis de Doctorado]. Universidad Agraria de la Habana; La Habana, Cuba: 2016.
45. Mateus L, Lopes da Costa L, Dinisz P, Ziecik A. Relationship between endotoxin and prostaglandin (PGE2 and PGFM) concentrations and ovarian function in dairy cows with puerperal endometritis. Anim Reprod Sci J. 2003; 76(3-4):143-154. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(02)00248-8
47. Čengić B, Varatanovié N, Mutevelié T, Katica A, Mlačo M, Ćutuk A. Normal and abnormal uterine involution in cow a monitored by ultrasound. Biotechnol Anim Husb. 2012; 28(2):205-217. https://doi.org/10.2298/BAH1202205C
49. Ortega Adriana, López R, Mapes Gabriela, Ortiz Ó, Hernández J. Patologías uterinas y fertilidad de vacas lecheras tratadas con dos inyecciones de PGF2α en las primeras 48 horas posparto. Vet Méx. 2012; 43(3):235-240.
51. Csaba A, Szenci O, van der Weijden Doornenbal A, Maassen Francesca, Bartyik J, Taverne, Marcel. The effect of a single oxytocin or carbetocin treatment on uterine contractility in early postpartum dairy cows. Theriogenol. 2006; 65(2):400-414. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.05.040
53. LeBlanc S. "Monitoring metabolic health of dairy cattle in the transition period". J Reprod Dev. 2010; 56(Suppl):S29-35. https://doi.org/10.1262/jrd.1056S29