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Evaluación de la primera alimentación en larvas de capaz Pimelodus grosskopfii bajo condiciones de laboratorio

Evaluación de la primera alimentación en larvas de capaz Pimelodus grosskopfii bajo condiciones de laboratorio



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Valbuena V, R., Zapata-Berruecos, B., & Otero-Paternina, A. (2013). Evaluación de la primera alimentación en larvas de capaz Pimelodus grosskopfii bajo condiciones de laboratorio. Revista MVZ Córdoba, 18(2), 3518-3524. https://doi.org/10.21897/rmvz.176

Dimensions
PlumX
Rubén Valbuena V
Beatriz Zapata-Berruecos
Angélica Otero-Paternina

RESUMEN

Objetivo. Evaluar el desempeño y sobrevivencia de larvas de capaz Pimelodus grosskopfii suministrando alimento vivo (Cladóceros, Copépodos y Artemia salina). Materiales y métodos. Larvas de capaz fueron ubicadas en recipientes plásticos con un volumen útil de 3 L, a una densidad de 10 larvas L-1, fueron alimentadas cuatro veces al día, durante 15 días con nauplios de Artemia recién eclosionadas, Cladóceros de los géneros Moina y Ceriodaphnia y Copépodos calanoides. Las larvas de capaz se pesaron y se midieron al inicio y al final del experimento para estimar ganancia en peso (GP), ganancia en longitud (GL), tasa de crecimiento específico (TCE), Factor de crecimiento relativo (FCR) y sobrevivencia (S) Resultados. El tratamiento que presentó los mejores resultados en GP, GL y S fue el de larvas alimentadas con nauplios de Artemia (3.8 ± 0.2 mg, 8 ± 0.7 mm y 48.3% respectivamente) seguido de los tratamientos donde adicionó cladóceros y copépodos Conclusiones. Los nauplios de Artemia fue el tratamiento que presentó los mejores resultados en las variables productivas evaluadas en larvas de P. grosskopfii al inicio de su alimentación exógena.


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  1. Valbuena-Villarreal RD, Zapata-Berruecos BE, Cruz-Casallas PE. Reproducción inducida de Capaz (Pimelodus grosskopfii) con extracto de hipófisis de carpa: reporte preliminar. Revista Orinoquia 2010; 14 (2):133-139.
  2. Maldonado-Ocampo JA, Vari RP, Usma JS. Checklist of the freswater fishes of Colombia. Biota Colombiana 2008; 9(2): 143-237.
  3. Villa-Navarro FA. Diferenciación entre poblaciones de Pimelodus clarias y Pimelodus grosskopffi (Siluriformes: Pimelodidae) en la cuenca del río Magdalena Colombia. [Tesis de Maestría]. Cali, Colombia: Universidad del Valle; 2002.
  4. Instituto Colombiano de Desarrollo Rural – INCODER y Corporación Colombia Internacional. Pesca y Acuicultura. [Informe técnico]. Bogotá, Colombia; 2006.
  5. Atencio-García VJ, Zaniboni-Fhilo E. El canibalismo en la larvicultura de peces. Rev MVZ Córdoba 2006; 11(1): 9-19
  6. Kestemont P, Jourdan S, Houbart C, Paspatis M, Fontaine P, Cuvier A, Kentouri M, Baras E. Size heterogeneity, cannibalism and competition in cultured predatory fish larvae: biotic and abiotic influences. Aquacult 2003; 227: 333-356. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00513-1
  7. Chuan Lim L, Dhert P, Sorgeloos P. Recent developments in the application of live feeds in the freshwater ornamental fish culture. Aquacult 2003; 227:319-331. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00512-X
  8. Sipaúba-Tavares LH, Rocha O. Produção de Plâncton (fitoplâncton e Zooplâncton) para alimentação de Organismos Aquáticos. 1ra ed. São Carlos: RIMA; 2003.
  9. Junqueira CAP. Efeito da temperatura no desenvolvimento inicial de larvas de "Curimbatá" Prochilodus scrofa Steindachner, 1882 (Characi formes, Prochilodontidae). [Tesis Maestría]. Santa Catarina, Brasil: Universidade Federal Santa Catarina; 1999.
  10. Atencio-García V, Kerguelén E, Wadnipar L, Narváez A. Manejo de la primera alimentación del bocachico (Prochilodus magdalenae). Rev MVZ Córdoba 2003; 8(1):254-260.
  11. Link de Rosso F, Bolner K, Baldisserotto B. Ion fluxes in silver catfish (Rhamdia quelen) juveniles exposed to different dissolved oxygen levels. Neotrop Ichthyol 2006; 4(4):435-440. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252006000400007
  12. Nu-ez J, Duque R, Corcuy-Arana N, Duponchelle F, Renno J, Raynaud T. Induced breeding and larval rearing of Surubí, Pseudoplatystoma fasciatum (Linneaus, 1766), from the bolivian Amazon. Aquac Res 2008; 39:764-776. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.01928.x
  13. Marciales-Caro LJ, Díaz-Olarte JJ, MedinaRobles VM, Cruz-Casallas PE. Evaluación del crecimiento y sobrevivencia de larvas de bagre rayado Pseudoplatystoma fasciatum (Linneaus, 1766) alimentadas con alimento vivo natural y enriquecido con ácidos grasos. Rev Colomb Cienc Pecu 2010; 23:308-316.
  14. Díaz-Olarte JJ, Cruz-Casallas NE, MarcialesCaro LJ, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Efectos de la densidad de siembra y disponibilidad de alimento sobre el desarrollo y sobrevivencia de larvas de Pseudoplatystoma fasciatum. Revista Orinoquia 2009; 13 (1): 21-30.
  15. Ramírez-Merlano JA, Otero-Paternina AM, Corredor-Santamaría W, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE, Velasco-Santamaría, YM. Utilización de organismos vivos como primera alimentación de larvas de yaque (Leiarius marmoratus) bajo condiciones de laboratorio. Revista Orinoquia 2010; 14(1):45-58.
  16. Pereira C, Barcellos L, Kreutz L, Quevedo R, Ritter F, Silva L. Embryonic and larval development of jundiá (Rhamdia quelen, Quay & Gaimard, 1824, pisces, Teleostei), a South American catfish. Braz J Biol 2006; 66(4):1057-1063. http://dx.doi.org/10.1590/S1519-69842006000600013
  17. Novoa JD, Cata-o Y. Descripción del desarrollo embrionario y larvario del blanquillo Sorubim cuspicaudus (Littmann, Burr y Nass, 2000). [Tesis de pregrado]. Montería, Colombia: Universidad de Córdoba; 2005.
  18. Atencio García VJ, Pertuz Buelvas VM, Pérez Espitia F, Ortiz Mestra R, Pardo Carrasco SC. Manejo de la primera alimentación de dorada Brycon sinuensis ofreciendo larvas de bocachico Prochilodus magdalenae. Rev Colomb Cienc Pecu 2010; 23:317-324.
  19. Meza-González OR, Benítez-Flores J, Paredes-Dominguez BM, González-Valle M. Descripción histológica del sistema digestivo en larvas de Chirostoma humboldtianum en la primera alimentación exógena. CIVA 2002; 313-322.
  20. Atencio-García V, Zaniboni-Fhilo E, PardoCarrasco S, Arias-Castellanos A. Influência da primeira alimentação na larvicultura e alevinagem do yamú Brycon siebenthalae. Acta Scientarium 2003; 25:61-72. http://dx.doi.org/10.4025/actascianimsci.v25i1.2092
  21. Mu-oz F, Tobar JM, Arias JA. Respuesta a la primera alimentación en larvas de barbilla Rhamdia sebae C.F. (Pisces: Siluriformes, Pimelodidae). Revista Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial 2007; 5(1):47-93.
  22. Hung L, Tuan N, Cacot P, Lazard J. Larval rearing of the Asian Catfish, Pangasius bocourti (Silu roidei , Panga siidae) : alternative feeds and weaning time. Aquacult 2002; 212:115- 127. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00737-2
  23. Sorgeloos P, Dhert A, Candreva P. Use of the brine shrimp, Artemia spp., in marine fish larviculture. Aquacult 2001; 200:147-159. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00698-6
  24. Baras E, Jobling M. Dynamics of intracohort cannibalism in cultures fish. Aquacult Res 2002; 33:461-479. http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-2109.2002.00732.x
  25. Baras E, Kestemont P, Melard C. Effect of stocking density on the dynamics of cannibalism in sibling larvae of Perca fluviatilis under controlled conditions. Aquacult 2003; 219:241-255. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00349-6
  26. Cubillos YD. Evaluación del suministro de organismos vivos como primera alimentación de larvas de bagre rayado Pseudoplatystoma fasciatum, bajo condiciones laboratorio. [Tesis de pregrado]. Fusagasugá, Colombia: Universidad de Cundinamarca; 2010.
  27. Hernández-Bedoya JP, Gómez C, PrietoGuevara MJ, Atencio-García VJ, PardoCarrasco SC. Larvicultura del blanquillo Sorubim cuspicaudus alimentados con tres tipos de presas vivas En: IV Congreso Colombiano de Acuicultura. Medellín: Universidad de Antioquia: 2008.

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