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Mercurio total (Hg-T) en ictiofauna de mayor consumo en San Marcos - Sucre, Colombia

Total mercury (T-Hg) in ichthyofauna with the highest consumption in San Marcos - Sucre, Colombia



Cómo citar
Romero-Suárez, D. E. ., Pérez-Flórez , L. ., Consuegra-Solórzano, A. ., Vidal-Durango , J. ., Buelvas-Soto, J., & Marrugo-Negrete, J. . (2024). Mercurio total (Hg-T) en ictiofauna de mayor consumo en San Marcos - Sucre, Colombia. Revista MVZ Córdoba, 27(3), e2488. https://doi.org/10.21897/rmvz.2488

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Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Daniel Esteban Romero-Suárez
Liseth Pérez-Flórez
Adolfo Consuegra-Solórzano
Jhon Vidal-Durango
Jorge Buelvas-Soto
José Marrugo-Negrete

Daniel Esteban Romero-Suárez,

Universidad de Sucre, Grupo de investigación Conservación del Recurso Hídrico y Alimentos (CRHIA), Sincelejo, Colombia


Liseth Pérez-Flórez ,

Universidad de Sucre, Grupo de investigación Conservación del Recurso Hídrico y Alimentos (CRHIA), Sincelejo, Colombia


Adolfo Consuegra-Solórzano,

Universidad de Sucre, Grupo de investigación Conservación del Recurso Hídrico y Alimentos (CRHIA), Sincelejo, Colombia


Jhon Vidal-Durango ,

Universidad de la Costa, Barranquilla, Colombia


Jorge Buelvas-Soto,

Universidad de Córdoba, Grupo de investigación Aguas, Química aplicada y Ambiental, Montería, Colombia


José Marrugo-Negrete,

Universidad de Córdoba, Grupo de investigación Aguas, Química aplicada y Ambiental, Montería, Colombia


Objetivo. Se cuantificó el Hg en músculo dorsal de las 11 especies de peces más consumidas en San Marcos, localizado en la región de la Mojana. Materiales y métodos. Se tomaron muestras del músculo dorsal de las especies ícticas, cuantificando las concentraciones de Hg-T mediante espectrofotometría de absorción atómica por vapor frío (CVAAS). Resultados. Las especies que presentaron los más altos valores de Hg-T fueron las de hábitos alimenticios carnívoros: Pseudoplatystoma magdaleniatum (0.44 ± 0.09 µg/g), Plagioscion surinamensis (0.42 ± 0.14 µg/g) y Hoplias malabaricus (0.39 ± 0.11 µg/g). No obstante, la máxima cantidad recomendable de Hg en peces (0.5 µg/g) fijado por la Unión Europea, no fue superada por ninguna de las especies estudiadas. Conclusiones. Se concluye que la ictiofauna comercial de la Mojana está contaminada por Hg, resultado de las actividades mineras que se desarrollan en los cauces de los ríos que descargan en esta región. El consumo persistente de pescado proveniente de las zonas evaluadas por parte de sus pobladores representa un alto riesgo, debido a la alta toxicidad del Hg, el cual presenta efectos adversos en la salud humana aun cuando es consumido en dosis bajas durante periodos de tiempo prolongados.


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  1. Beckers F, Rinklebe J. Cycling of mercury in the environment: Sources, fate, and human health implications: A review. Crit Rev Environ Sci Technol. 2017;47(9):693–794. https://doi:10.1080/10643389.2017.1326277
  2. Niane B, Guédron S, Feder F, Legros S, Ngom PM, Moritz R. Impact of recent artisanal small-scale gold mining in Senegal: Mercury and methylmercury contamination of terrestrial and aquatic ecosystems. Sci Total Environ. 2019;669:185–9.https:// doi:10.1016/j.scitotenv.2019.03.108
  3. Okpala COR, Sardo G, Vitale S, Bono G, Arukwe A. Hazardous properties and toxicological update of mercury: From fish food to human health safety perspective. Crit Rev Food Sci Nutr. 2018;58(12):1986–2001. https://doi:10.1080/10408398.2017.1291491
  4. P, Du B, Chan HM, Feng X. Human inorganic mercury exposure, renal effects and possible pathways in Wanshan mercury mining area, China. Environ Res. 2015;140:198–204. https://doi.org/10.1016/j.envres.2015.03.033
  5. Lavoie RA, Jardine TD, Chumchal MM, Kidd KA, Campbell LM. Biomagnification of mercury in aquatic food webs: a worldwide meta-analysis. Environ Sci Technol. 2013;47(23):13385–94. https://doi.org/10.1021/es403103t
  6. Pinedo-Hernández J, Marrugo-Negrete J, Díez S. Speciation and bioavailability of mercury in sediments impacted by gold mining in Colombia. Chemosphere. 2015;119:1289–95. https://doi: 10.1016/j.chemosphere.2014.09.044
  7. Marrugo Negrete J, Pinedo-Hernández J, Paternina-Uribe R, Quiroz-Aguas L, Pacheco-Florez S. Distribución espacial y evaluación de la contaminación ambiental por mercurio en la región de la Mojana, Colombia. Rev MVZ Cordoba. 2018;23(S):7062–75. https://doi.org/10.21897/rmvz.1481
  8. Díaz SM, Muñoz-Guerrero MN, Palma-Parra M, Becerra-Arias C, Fernández-Niño JA. Exposure to mercury in workers and the population surrounding gold mining areas in the Mojana region, Colombia. Int J Environ Res Public Health. 2018;15(11):2337. https://doi.org/10.3390/ijerph15112337
  9. Isaacs Cubides P. Rehabilitación del ecosistema de humedal en la región de la Mojana para mitigar efecto de las inundaciones. 2020 ; Available from: http://repository.humboldt.org.co/handle/20.500.11761/35508
  10. Evenson GR, Golden HE, Lane CR, McLaughlin DL, D’Amico E. Depressional wetlands affect watershed hydrological, biogeochemical, and ecological functions. Ecol Appl. 2018;28(4):953–66. https://doi:10.1002/eap.1701
  11. Marrugo-Negrete J, Pinedo-Hernández J, Marrugo-Madrid S, Díez S. Assessment of trace element pollution and ecological risks in a river basin impacted by mining in Colombia. Environ Sci Pollut Res Int. 2021;28(1):201–10. https://doi.org/10.1007/s11356-020-10356-4
  12. Marrugo-Negrete J, Vargas-Licona S, Ruiz-Guzmán JA, Marrugo-Madrid S, Bravo AG, Díez S. Human health risk of methylmercury from fish consumption at the largest floodplain in Colombia. Environ Res. 2020;182(109050):109050.https://doi.org/10.1016/j.envres.2019.109050
  13. Marrugo-Negrete J, Benítez LN, Olivero-Verbel J, Lans E, Vazquez Gutierrez F. Spatial and seasonal mercury distribution in the Ayapel Marsh, Mojana region, Colombia. Int J Environ Health Res. 2010;20(6):451–9. https://DOI: 10.1080/09603123.2010.499451
  14. Mojica JI, Vélez JCC. Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia. 1st ed. Bogotá: Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt; 2012. http://hdl.handle.net/20.500.11761/34197
  15. Sadiq M, Zaidi TH, Al-Mohana H. Sample weight and digestion temperature as critical factors in mercury determination in fish. Bull Environ Contam Toxicol. 1991;47(3):335–41. https://doi: 10.1007/BF01702191.
  16. Atencio G V, Kerguelén D E, Naar E, Petro R. Desempeño reproductivo del bocachico Prochilodus magdalenae inducido dos veces en un mismo año. Rev MVZ Cordoba. 2013;3304–10. https://doi.org/10.21897/rmvz.192
  17. Jiménez-Segura LFF, Palacio J, López R. Características biológicas del blanquillo Sorubim cuspicaudus littmann; Burr y Nass, 2000 y Bagre rayado Pseudoplatystoma magnaleniatumBuitrago-Suárez y Burr, 2007 (Siluriformes: Pimelodidae). Actual Biol. 2009;31(90):1–14. https://revistas.udea.edu.co/index.php/actbio/article/view/4729
  18. Buendía Lara D, Argumedo Díaz J, Olaya-Nieto C, Segura-Guevara F, Brú-Cordero S, Tordecilla-Petro G. Biología reproductiva del blanquillo (Sorubim cuspicaudus Littmann et al., 2000) en la cuenca del Río Sinú, Colombia. Rev MVZ Cordoba. 2006;71–8. https://doi.org/10.21897/rmvz.1046
  19. Ibagón N, Maldonado-Ocampo JA, Cioffi M de B, Dergam JA. Chromosomal diversity of Hoplias malabaricus (Characiformes, erythrinidae) along the Magdalena river (Colombia—northern south America) and its significance for the neotropical region. Zebrafish. 2020;17(3):211–9. https://doi.org/10.1089/zeb.2019.1827
  20. Guimarães CBS, Pflanzer Junior SB, Pinheiro HP, Mendes TMF, Ueta MT. Centesimal composition and meat yield of Hoplias malabaricus: association with intestinal parasites. Braz J Vet Parasitol 2021; 30(1):e021120. https://doi.org/10.1590/S1984-29612021020
  21. Salazar-Camacho C, Salas-Moreno M, Paternina-Uribe R, Marrugo-Negrete J, Díez S. Mercury species in fish from a tropical river highly impacted by gold mining at the Colombian Pacific region. Chemosphere. 2021;264(Pt 2):128478. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2020.128478
  22. Azevedo-Silva CE, Almeida R, Carvalho DP, Ometto JPHB, de Camargo PB, Dorneles PR, et al. Mercury biomagnification and the trophic structure of the ichthyofauna from a remote lake in the Brazilian Amazon. Environ Res. 2016;151:286–96. https://doi.org/10.1016/j.envres.2016.07.035
  23. Mille T, Bisch A, Caill-Milly N, Cresson P, Deborde J, Gueux A, et al. Distribution of mercury species in different tissues and trophic levels of commonly consumed fish species from the south Bay of Biscay (France). Mar Pollut Bull. 2021;166(112172):112172. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112172
  24. Segura-Guevara F, López-Corrales H, Medrano De La Hoz C, Olaya-Nieto CW. Biología reproductiva de Liseta Leporinus muyscorum Steindachner, 1901 en el río Sinú, Colombia. Rev MVZ Cordoba. 2017;22(1):5728–37. https://doi.org/10.21897/rmvz.932
  25. Morales J, García-Alzate CA. Ecología trófica y rasgos ecomorfológicos de Triportheus magdalenae (Characiformes: Triportheidae) en el embalse El Guájaro, cuenca baja del río Magdalena, Colombia. Rev Biol Trop. 2018;66(3):1208. https://doi.org/10.15517/rbt.v66i3.30621
  26. Paranjape AR, Hall BD. Recent advances in the study of mercury methylation in aquatic systems. Facets (Ott). 2017;2(1):85–119. https://doi.org/10.1139/facets-2016-0027
  27. Valdelamar Villegas JC. Apuntes sobre la importancia ecológica, ambiental y social de la arenca Triportheus magdalenae (Steindachner, 1878). Un ejemplo de endemismo invisibilizado. Intropica. 2018;152. https://doi.org/10.21676/23897864.2628
  28. Marrugo-Negrete J, Navarro-Frómeta A, Ruiz-Guzmán J. Total mercury concentrations in fish from Urrá reservoir (Sinú river, Colombia). Six years of monitoring. Rev MVZ Cordoba. 2015;20(3):4754–65. https://doi.org/10.21897/rmvz.45
  29. Qian Y, Cheng C, Feng H, Hong Z, Zhu Q, Kolenčík M, et al. Assessment of metal mobility in sediment, commercial fish accumulation and impact on human health risk in a large shallow plateau lake in southwest of China. Ecotoxicol Environ Saf. 2020;194(110346):110346. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.110346
  30. López-Casas S, Jiménez-Segura LF, Agostinho AA, Pérez CM. Potamodromous migrations in the Magdalena River basin: bimodal reproductive patterns in neotropical rivers: Potamodromous migrations in the magdalena river basin. J Fish Biol. 2016;89(1):157–71. https://doi.org/10.1111/jfb.12941
  31. Argumedo G, Marcela P, Vergara C, Vidal JV, Marrugo-Negrete J. Evaluación de la concentración de mercurio en arroz (Oryza sativa) crudo y cocido procedente del municipio de San Marcos- Sucre y zona aurífera del municipio de Ayapel – Córdoba. Rev. Univ. Ind. Santander. 2015; 47(2), 169-177. https://revistas.uis.edu.co/index.php/revistasaluduis/article/view/4826
  32. Zapata L, Usma J. Guía de las especies Migratorias de la Biodiversidad en Colombia. Peces. Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible / WWF-Colombia. Bogotá, D.C. Colombia. 2013. Vol. 2. https://wwflac.awsassets.panda.org/downloads/migratoriaspeces_42_web_final.pdf
  33. Li H, Zheng D, Yang J, Wu C, Zhang S, Li H, et al. Salinity and redox conditions affect the methyl mercury formation in sediment of Suaeda heteroptera wetlands of Liaoning province, Northeast China. Mar Pollut Bull. 2019;142:537–43. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2019.03.066
  34. Monteiro DA, Taylor EW, Rantin FT, Kalinin AL. Impact of waterborne and trophic mercury exposures on cardiac function of two ecologically distinct Neotropical freshwater fish Brycon amazonicus and Hoplias malabaricus. Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. 2017;201:26–34. https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2017.09.004
  35. Morcillo P, Angeles Esteban M, Cuesta A. Mercury and its toxic effects on fish. AIMS Environ Sci. 2017;4(3):386–402. https://doi.org/10.3934/environsci.2017.3.386
  36. Sun Y, Li Y, Rao J, Liu Z, Chen Q. Effects of inorganic mercury exposure on histological structure, antioxidant status and immune response of immune organs in yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco ): Mercury induces oxidative stress and immune response in immune organs. J Appl Toxicol. 2018;38(6):843–54. https://doi.org/10.1002/jat.3592
  37. Pereira P, Korbas M, Pereira V, Cappello T, Maisano M, Canário J, et al. A multidimensional concept for mercury neuronal and sensory toxicity in fish - From toxicokinetics and biochemistry to morphometry and behavior. Biochim Biophys Acta Gen Subj. 2019;1863(12):129298. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2019.01.020
  38. Olivero-Verbel J, Carranza-Lopez L, Caballero-Gallardo K, Ripoll-Arboleda A, Muñoz-Sosa D. Human exposure and risk assessment associated with mercury pollution in the Caqueta River, Colombian Amazon. Environ Sci Pollut Res Int. 2016;23(20):20761–71. https://doi.org/10.1007/s11356-016-7255-3
  39. Calao CR, Marrugo JL. Efectos genotóxicos en población humana asociados a metales pesados en la región de La Mojana, Colombia, 2013. Biomedica [Internet]. 2015;35(0). Available from: https://doi.org/10.7705/biomedica.v35i0.2392
  40. Rice KM, Walker EM Jr, Wu M, Gillette C, Blough ER. Environmental mercury and its toxic effects. J Prev Med Public Health. 2014;47(2):74–83. https://doi.org/10.3961/jpmph.2014.47.2.74
  41. Oliveira LF, Rodrigues LD, Cardillo GM, Nejm MB, Guimarães-Marques M, Reyes-Garcia SZ, et al. Deleterious effects of chronic mercury exposure on in vitro LTP, memory process, and oxidative stress. Environ Sci Pollut Res Int. 2020;27(7):7559–69. https://doi.org/10.1007/s11356-019-06625-6

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