Identificación de especies de Eimeria presentes en caprinos (Capra aegagrus hircus) en Nuevo León, México

Identification of Eimeria species present in goats (Capra aegagrus hircus) in Nuevo León, Mexico

Objetivo. Identificar, describir y determinar la frecuencia de especies de género Eimeria a partir de heces de cabra del estado de Nuevo León, México. Materiales y métodos. Se colectaron 403 muestras de excretas de caprinos de 13 municipalidades de Nuevo León, México. Posteriormente, tras la esporulación de las formas de dispersión parasitaria (Ooquistes), se realizó la identificación en función de su morfología y morfometría mediante histogramas y análisis de regresión lineal. Resultados. Un total de 60.29% de los animales muestreados resultaron positivos a la presencia de ooquistes de Eimeria spp. Las municipalidades en las que con más frecuencia se detectó este parásito fueron Ramones y Pesquería con 100% de muestras positivas, mientras que se observó una menor frecuencia en el municipio de Aramberri con 3.4%. El análisis morfológico y morfométrico de los ooquistes esporulados permitió identificar ocho tipos diferentes de Eimerias en el grupo de animales estudiados siendo estas ocho especies: E. caprina, E. caprovina, E. christenseni, E. ninakohlyakimovae, E. jolchijevi, E. alijevi, E. arloingi y E. apsheronica. Conclusiones. La mayoría de las especies de Eimeria spp. identificadas presentaron un alto grado de polimorfismo, acorde a sus características morfométricas se logró identificar ocho especies, incluida E. apsheronica la cual previamente no ha sido descrita en México. Se requiere ampliar los estudios de las especies de Eimeria circulantes en caprinos de México.

1. Zhang W, Wang R, Yang F, Zhang L, Cao J, Zhang X, et al. Distribution and genetic characterizations of Cryptosporidium spp. in pre-weaned dairy calves in Northeastern China’s Heilongjiang Province. PLoS One. 2013; 8(1):e54857.http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0054857
2. Daş G, Ataşoğlu C, Akbağ HI, Tölü C, Yurtman IY, Savaş T. Effects of kefir on coccidial oocysts excretion and performance of dairy goat kids following weaning. Trop Anim Health Prod. 2012; 44 (5):1049–55. http://dx.doi.org/10.1007/s11250-011-0039-3
3. Khodakaram-Tafti A, Hashemnia M. An overview of intestinal coccidiosis in sheep and goats. Revue Méd Vét. 2017; 168(1/3):9-20. https://www.revmedvet.com/2017/RMV168_9_20.pdf
4. Silva LMR, Carrau T, Vila-Viçosa MJM, Musella V, Rinaldi L, Failing K, et al. Analysis of potential risk factors of caprine coccidiosis. Vet Parasitol. 2020; 22(100458):100458. http://dx.doi.org/10.1016/j.vprsr.2020.100458
5. Andrews AH. Some aspects of coccidiosis in sheep and goats. Small Rumin Res. 2013; 110(2–3):93–95. http://dx.doi.org/10.1016/j.smallrumres.2012.11.011
6. Bangoura B, Bardsley KD. Ruminant coccidiosis. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2020; 36(1):187–203. http://dx.doi.org/10.1016/j.cvfa.2019.12.006
7. Al-Habsi K, Yang R, Ryan U, Miller DW, Jacobson C. Morphological and molecular characterization of three Eimeria species from captured rangeland goats in Western Australia. Vet Parasitol. 2017; 9:75–83. http://dx.doi.org/10.1016/j.vprsr.2017.05.001
8. Macedo LO de, Santos MAB, Silva NMM da, Barros GMM do R, Alves LC, Giannelli A, et al. Morphological and epidemiological data on Eimeria species infecting small ruminants in Brazil. Small Rumin Res. 2019; 171:37–41. http://dx.doi.org/10.1016/j.smallrumres.2018.12.006
9. Alcala-Canto Y, Figueroa-Castillo JA, Ibarra-Velarde F, Vera-Montenegro Y, Cervantes-Valencia ME, Alberti-Navarro A. First database of the spatial distribution of Eimeria species of cattle, sheep and goats in Mexico. Parasitol Res. 2020; 119(3):1057–1074. http://dx.doi.org/10.1007/s00436-019-06548-8
10. Statistical and Geographic Yearbook of Nuevo León.
11. http://internet.contenidos.inegi.org.mx/contenidos/Productos/prod_serv/contenidos/espanol/bvinegi/productos/nueva_estruc/anuarios_2017/702825094911.pdf
12. Foreyt WJ. Veterinary parasitology: reference manual. Fifth edition Iowa State University Press: United States; 2001.
13. Berto BP, McIntosh D, Lopes CWG. Studies on coccidian oocysts (Apicomplexa: Eucoccidiorida). Rev Bras Parasitol Vet. 2014; 23(1):1–15. http://dx.doi.org/10.1590/s1984-29612014001
14. Chartier C, Paraud C. Coccidiosis due to Eimeria in sheep and goats, a review. Small Rumin Res. 2012; 103(1):84–92. http://dx.doi.org/10.1016/j.smallrumres.2011.10.022
15. Hashemnia M, Rezaei F, Chalechale A. Prevalence, intensity, and pathological lesions of Eimeria infection in goats in western Iran. Comp Clin Path. 2015; 24(4):805–810. http://dx.doi.org/10.1007/s00580-014-1986-7
16. Ghimire TR, Bhattarai N. A survey of gastrointestinal parasites of goats in a goat market in Kathmandu, Nepal J Parasit Dis. 2019; 43(4):686–695. http://dx.doi.org/10.1007/s12639-019-01148-w
17. Kahan TB, Greiner EC. Coccidiosis of Goats in Florida, USA. Open J Vet Med. 2013; 3(3):209–212. http://dx.doi.org/10.4236/ojvm.2013.33033
18. Zhao GH, Lei L-H, Shang C-C, Gao M, Zhao YQ, Chen C-X, et al. High prevalence of Eimeria infection in dairy goats in Shaanxi province, northwestern China. Trop Anim Health Prod. 2012; 44(5):943–946. http://dx.doi.org/10.1007/s11250-011-9997-8
19. Bawm S, Win TZB, Win SY, Htun LL, Nakao R, Katakura K. First detection of Eimeria species in Myanmar domestic goats with both microscopic and molecular methods. Parasite. 2020; 27:38. http://dx.doi.org/10.1051/parasite/2020037
20. Sharma D, Paul S, Rout P, Mandal A, Bhusan S, Sharma N, et al. Caprine coccidiosis in semi-arid India: Dynamics and factors affecting fecal oocysts count. J Adv Vet Anim Res. 2017; 4(1):1. http://dx.doi.org/10.5455/javar.2017.d190
21. Mohamaden WI, Sallam NH, Abouelhassan EM. Prevalence of Eimeria species among sheep and goats in Suez Governorate, Egypt. Int J Vet Sci Med. 2018; 6(1):65–72. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijvsm.2018.02.004