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Nemátodos en Trichomycterus nigromaculatus (Pisces: Trichomycteridae) en el Río Gaira, Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia

Nematodes in Trichomycterus nigromaculatus (Pisces: Trichomycteridae) from the Río Gaira, Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia



Cómo citar
Toncel-Palencia, C. ., & García-Alzate, C. (2024). Nemátodos en Trichomycterus nigromaculatus (Pisces: Trichomycteridae) en el Río Gaira, Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia. Revista MVZ Córdoba, 29(1), e3250. https://doi.org/10.21897/rmvz.3250

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Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Carlos Toncel-Palencia
Carlos García-Alzate

Carlos Toncel-Palencia,

Universidad del Atlántico, Facultad de Ciencias Básicas, Atlántico, Grupo de Investigación Estudios en Sistemática y Conservación Barranquilla, Colombia


Carlos García-Alzate,

Corporación Universitaria Autónoma del Cauca, Facultad de Ciencias Ambientales y Desarrollo Sostenible, Cauca, Popayán, Colombia. 


Objetivo. Determinar la prevalencia de infección por helmintos en Trichomycterus nigromaculatus capturados en ambientes definidos desde la fisicoquímica del Río Gaira, en Minca, Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia. Material y Métodos. Se recolectaron 476 ejemplares de T. nigromaculatus abarcando ambos períodos climáticos de la zona, los cuales fueron diseccionados para analizar la cavidad visceral. Los parásitos aislados fueron fijados en formol al 10% para su posterior aclaración. Los ejemplares fueron identificados a través de observación de estadios adultos al microscopio estereoscópico posterior a su aclaración. Resultados. Se encontraron ejemplares exclusivamente del género Spirocamallanus (Nematoda) la especie Spirocamallanus sp. La prevalencia parasitaria osciló entre 0% en agosto a 28.57% en abril con una abundancia de 1.09 vermes/hospedador. Parámetros ambientales como oxígeno disuelto (Promedio:5.65 mg. L-1, Max:7.5 mg. L-1, Min:4.41 mg. L-1); pH (Promedio:7.2, Max: 9.3, Min: 5.7) y conductividad (Promedio:72.82 µs.cm-1, Max: 123.7 µs.cm-1, Min: 40 µs.cm-1) presentaron diferencias estadísticamente significativas, el ambiente se comportó como eutrofizado. Conclusiones. En las áreas de presencia de la asociación parasitaria fueron descritos Spirocamallanus sp., en T. nigromaculatus constituye un nuevo registro para el Caribe colombiano y una ampliación de la distribución geográfica y del rango de hospedadores del nemátodo.


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  1. Hoffman GL. Parasites of North American freshwater fishes. Cornell University Press. 2019. https://doi.org/10.1645/13-394.1
  2. Esch GW, Fernandez JC. A functional biology of parasitism: Ecological and evolutionary implications. Springer Science & Business Media (Eds.); 2013. https://doi.org/10.1007/978-94-011-2352-5
  3. Lafferty KD, Kuris AM. How environmental stress affects the impacts of parasites. Limnology and Oceanography. 1999; 44(3part2):925-931. https://aslopubs.onlinelibrary.wiley.com/doi/pdf/10.4319/lo.1999.44.3_part_2.0925
  4. Tavares-Dias M, Oliveira MSB, Gonçalves RA, Silva LMA. Ecology and seasonal variation of parasites in wild Aequidens tetramerus, a Cichlidae from the Amazon. Acta Parasitologica. 2014; 59(1):158-164.
  5. https://doi.org/10.2478/s11686-014-0225-3
  6. Dias MKR, Neves LR, Marinho RGB, Pinheiro DA, Tavares-Dias M. Parasitismo em tambatinga (Colossoma macropomum and Piaractus brachypomus, Characidae) cultivados na Amazônia, Brasil. Acta Amazon. 2015; 45(2):231-238. https://doi.org/10.1590/1809-4392201400974
  7. Terán HR, Ramallo G, Alcaide MF. Efectos producidos por Procamallanus (Spirocamallanus) hilarii Vaz & Pereira, 1934 (Nematoda, Camallanidae) en Astyanax fasciatus y Astyanax abramis (Pisces, Characidae). Acta Zoológica Lilloana. 2004; 48(1-2):123-135.
  8. https://doi.org/10.1016/j.rmb.2015.07.005
  9. Santana Piñeros A, Cruz Quintana Y, Castillo Olaya V. Parámetros de infección de Procamallanus (Spirocamallanus) cf. pintoi en Corydoras metae de Villavicencio, Colombia. La Técnica Revista De Las Agrociencias. 2017; 18:49-57. http://dx.doi.org/10.33936/la_tecnica.v0i18.806
  10. Ibarra-Trujillo EJ, García-Alzate CA. Ecología trófica y reproductiva de Hemibrycon sierraensis (Characiformes: Characidae), pez endémico del río Gaira, Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia. Revista de Biología Tropical. 2017; 65(3):1033-1045. http://dx.doi.org/10.15517/rbt.v65i3.29439
  11. Jiménez-Segura LF, Galvis-Vergara G, Cala-Cala P, García-Alzate CA, López-Casas S, Ríos-Pulgarín MI, et al. Freshwater fish faunas, habitats and conservation challenges in the Caribbean river basins of north‐western South America. Journal of Fish Biology. 2016; 89(1):65-101. https://doi.org/10.1111/jfb.13018
  12. Marchiori NC, Gonçalves ELT, Tancredo KR, Pereira-Júnior J, Garcia JRE, Martins ML. Effect of water temperature and salinity in oviposition, hatching success and infestation of Aphanoblastella mastigatus (Monogenea, Dactylogyridae) on Rhamdia quelen. Braz J Biol. 2015; 75(4 Suppl 1):245-252. https://doi.org/10.1590/1519-6984.14014
  13. Jerônimo GT, Pádua SB, Ventura AS, Gonçalves ELT, Ishikawa MM, Martins ML. Parasitological assessment in the hybrid surubim (Pseudoplatystoma reticulatum and P. corruscans), with uncommon occurrence of Monogenea parasites. Rev Bras Parasitol Vet. 2016; 25(2): 179-186. https://doi.org/10.1590/S1984-29612016037
  14. DoNascimiento C, Bogotá Gregory JD, Albornoz Garzón JG. Méndez López A, Villa Navarro FA, Herrera Collazos EE, Agudelo Zamora H, Arce MH. Lista de especies de peces de agua dulce de Colombia / Checklist of the freshwater fishes of Colombia. v. 2.13. Asociación Colombiana de Ictiólogos: Colombia; 2021. https://doi.org/10.15472/numrso.
  15. Moravec F, Chara J, Shinn AP. Two nematodes, Dentinema trichomycteri n. g., n. sp. (Cosmocercidae) and Procamallanus chimusensis Freitas & Ibáñez, 1968 (Camallanidae), from catfishes Trichomycterus spp. (Pisces) in Colombia. Syst Parasitol. 2004; 59(3):189–197. http://dx.doi.org/10.1023/B:SYPA.0000048098.80098.26
  16. Parra AB, Ramos IP, Delariva RL, de Arruda Amorim JP, Sereia DA de O, da Silva RJ, et al. Parasites of Cambeva davisi (Siluriformes: Trichomycteridae) from the Cascavel stream, Neotropical area. Biologia. 2021; 76(2):599–612. http://dx.doi.org/10.2478/s11756-020-00564-1
  17. Ibarra Trujillo EJ, García Alzate, CA. Ecología trófica y reproductiva del bagresito endémico Trichomycterus nigromaculatus (Siluriformes: Trichomycteridae) en el río Gaira, Colombia. Intropica: Revista del Instituto de Investigaciones Tropicales. 2023; 18(1):86-99. http://dx.doi.org/10.21676/23897864.4670
  18. Morales-Parrado J, García-Alzate CA. Estructura Trófica de la Ictiofauna de los arroyos del Corral de San Luis, Cuenca del Bajo Magdalena, Colombia. Rev Biol Trop. 2016; 64(2):715. http://dx.doi.org/10.15517/rbt.v64i2.18781
  19. Lipps WC, Braun-Howland EB, Baxter TE, editores. Standard methods for the examination of water and wastewaterTM. 24a ed. Washington D.C., DC, Estados Unidos de América: American Public Health Association; 2023. https://www.standardmethods.org/doi/book/10.2105/SMWW.2882
  20. Vergara-Flóre, V, Consuegra A. Contracaecum sp.(Nematode: Anisakidae) en peces de interés comercial en el golfo de Morrosquillo, Sucre-Colombia. Gestión y Ambiente. 2021; 24(2):97356-97356. https://doi.org/10.15446/ga.v24n2.97356
  21. Fusco AC, Brooks DR. A new species Spirocamallanus Olsen, 1952 (Nematoda: Camallanidae) from Trachycorystes insignis (Steindachner)(Pisces: Doradidae) in Colombia. Proc Helmithol Soc Wash. 1978; 45:111-114. https://bionames.org/archive/issn/0018-0130/45/111.pdf
  22. Moravec F, Wolter J, Körting W. Some nematodes and acanthocephalans from exotic ornamental freshwater fishes imported into Germany. Folia Parasitol (Praha). 1999; 46(4):296–310. https://folia.paru.cas.cz/pdfs/fol/1999/04/10.pdf
  23. Reiczigel J, Marozzi M, Fábián I, Rózsa L. Biostatistics for parasitologists - A primer to quantitative parasitology. Trends Parasitol. 2019; 35(4):277–281. http://dx.doi.org/10.1016/j.pt.2019.01.003
  24. Pandit DN, Gupta ML. Heapto-somatic index, gonado-somatic index and condition factor of Anabas testudineus as bio-monitoring tools of nickel and chromium toxicity. International Journal of Innovations in Engineering and Technology. 2019; 12(3):25-28.
  25. http://ijiet.com/wp-content/uploads/2019/03/5.pdf
  26. Ailán-Choke LG, Davies DA, Tavares LER, Pereira FB. An integrative taxonomic assessment of Procamallanus (Spirocamallanus) huacraensis (Nematoda: Camallanidae), infecting the freshwater catfish Trichomycterus spegazzinii (Siluriformes: Trichomycteridae) in Argentina. Parasitol Res. 2019; 118(10):2819. http://dx.doi.org/10.1007/s00436-019-06429-0
  27. Choke LA, Ramallo G, Nieva L, Davies D. Nuevos registros de helmintos parásitos en dos especies de peces fluviales, provincia de Salta, Argentina. Acta Zool Lilloana. 2014; 253–257. https://lillo.org.ar/journals/index.php/acta-zoologica-lilloana/article/view/165
  28. Rodríguez JG, Olivares JL, Sánchez Y, Ii C, Alemán Y, Arece J. Cambios climáticos y su efecto sobre algunos grupos de parásitos. Revista de Salud Animal. 2013; 35(3):145-150. http://scielo.sld.cu/pdf/rsa/v35n3/rsa01313.pdf
  29. Rocca LHD, Zielinski S. Community-based tourism, social capital, and governance of post-conflict rural tourism destinations: the case of Minca, Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia. Tourism management perspectives. 2022; 43:100985. http://dx.doi.org/10.1016/j.tmp.2022.100985
  30. Marinho RGB, Tavares-Dias M, Dias-Grigório MKR, Neves LR, Yoshioka ETO, Boijink CL, et al. Helminthes and protozoan of farmed pirarucu (Arapaima gigas) in eastern Amazon and host-parasite relationship. Arq Bras Med Vet Zootec. 2013; 65(4):1192-1202. https://doi.org/10.1590/S0102-09352013000400035
  31. Silva MT, Pinto GP, Cavalcante PHO, Santos FGA, Moutinho VAC, Portes CS. Helminth community structure of Arapaima gigas in semi-intensive and intensive fish farming systems in the southwestern Brazilian Amazon. Neotropic Helminthol. 2016; 10(2):219-231. https://www.neotropicalhelminthology.com/_files/ugd/1fc314_6e0e0a304c0a4b3cb95550b95931c6f0.pdf
  32. Martins WM de O, Justo MCN, Cárdenas MQ, Cohen SC. Seasonality of parasitic helminths of Leporinus macrocephalus and their parasitism rates in farming systems in the Amazon. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 2017; 26(4):419-426. https://doi.org/10.1590/S1984-29612017062
  33. Tavares-Dias M, Gonçalves RA, Oliveira MSB, Neves LR. Aspectos ecológicos dos parásitos en Cichlasoma bimaculatum (Cichlidae), pez ornamental de la Amazonia brasileña. Acta Biolo Colomb. 2017; 22(2):53. http://dx.doi.org/10.15446/abc.v22n2.60015
  34. Ailán-Choke LG, Tavares LE, Luque JL, Pereira FB. An integrative approach assesses the intraspecific variations of Procamallanus (Spirocamallanus) inopinatus, a common parasite in Neotropical freshwater fishes, and the phylogenetic patterns of Camallanidae. Parasitology. 2020; 147(14):1752-1764. https://doi.org/10.1017/S0031182020001687
  35. Bolaños-Alfaro JD, Cordero-Castro G, Segura-Araya G. Determinación de nitritos, nitratos, sulfatos y fosfatos en agua potable como indicadores de contaminación ocasionada por el hombre, en dos cantones de Alajuela (Costa Rica). Rev Tecnol Marcha. 2017; 30(4):15. http://dx.doi.org/10.18845/tm.v30i4.3408
  36. Pérez-Díaz JP, Ortega-Escobar HM, Ramírez-Ayala C, Flores-Magdaleno H, Sánchez-Bernal EI, Can-Chulim Á, et al. Concentración de nitrato, fosfato, boro y cloruro en el agua del río Lerma. Ecosistemas Recur Agropecu. 2019; 6(16):175–182. https://doi.org/10.19136/era.a6n16.1829
  37. Rojas VRP, Rojas VLN. Caracterización y determinación de la calidad de agua superficial. Rev Investig. 2023; 12(1):65–80. https://doi.org/10.26788/ri.v12i1.4014

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