Estreptococos beta-hemolítico en tilapias del Nilo (Oreochromis niloticus) cultivadas en Sullana, Piura - Perú

Beta-haemolytic streptococci in farmed Nile tilapia, Oreochromis niloticus, from Sullana-Piura, Peru

Objetivo. Esta investigación objetivó estudiar la presencia de Streptococcus spp. en tilapia (Oreochromis niloticus) de la piscifactoría localizada en Sullana-Piura, Perú. Materiales y Métodos. 150 peces con signos clínicos de la enfermedad estreptocócica fueron analizados, el aislamiento bacteriano se realizó en agar sangre, en correlación con las lesiones histopatológicas y diagnóstico molecular mediante PCR en tiempo real. Resultados. A la necropsia se observó exoftalmia, hifema, congestión y/o meninges hemorrágicas, ascitis, esplenomegalia, hepatomegalia y zonas hemorrágicas difusas en todo el cuerpo. 102 aislados positivos (54) tilapias para Streptococcus spp. fueron identificados en el análisis microbiológico (prevalencia del 26%), el cerebro fue el órgano con el más alto porcentaje del género de esta bacteria (34.31%), 19 aislados fueron beta-hemolítico (18.63%), con prevalencia de 10.12%. Peces con Streptococcus beta-hemolíticos presentaron epicarditis, perisplenitis y meningitis crónica, panoftalmitis, necrosis coagulativa del músculo esquelético y formación de granulomas. En el análisis de PCR en tiempo real, no se obtuvo ninguna tilapia positiva para S. iniae. Los resultados se analizaron mediante una simulación estocástica de la distribución beta usando el programa de incertidumbre @Risk, reportando una prevalencia media de 0.66% en tilapias enfermas. Conclusiones. Los peces analizados fueron positivos para bacterias del género Streptococcus, lo que confirma su presencia en la piscifactoría. Sin embargo, 19 aislados fueron beta-hemolíticos, y la presencia de S. iniae no fue positiva para la prevalencia límite de 2.7% en PCR en tiempo real.

1. Padua SB, Menezes-Filho RN, Martins ML, Belo MAA; Ishikawa MM, Nascimento CA, Saturnino KC, Carrijo-Mauad JR. A survey of epitheliocystis disease in farmed Nile tilapia (Linnaeus, 1758) in Brazil. J Appl Ichthyol 2015; 31(5):927-930.
2. Jiménez AP, Rey AL, Penagos LG, Ariza MF, Figueroa J, Iregui CA. Streptococcus agalactiae: Hasta ahora el único Streptococcus patógeno de tilapias cultivadas en Colombia. Rev Med Vet Zoot 2007; 54(2):285-294.
3. Castro MP, Claudiano GS, Petrillo TR, Shimada MT, Belo MAA, Machado CMM, Moraes JRE, Manrique WG, Moraes FR. Acute aerocystitis in Nile tilapia bred in net cages and supplemented with chromium carbochelate and Saccharomyces cerevisiae. Fish Shellfish Immunol 2014; 36(1):284-290.
4. Padua SB, Menezes-Filho RN, Belo MAA, Nagata MM. Nutritional additive Increases the survival rate and decreases parasitism in tilapia during the masculinization. Aqua Culture Asia Pacific 2014; 10(5):24-27.
5. Sakabe R, Moraes FR, Belo MAA, Moraes JER, Pilarski F. Kinects of cronic inflammation in Nile tilapia supplemented with essential fatty acids n-3 and n-6. Pesq Agropec Bras 2013; 48(3):313-319.
6. Manrique WG, Claudiano GS, Petrillo TR, Castro MP, Figueiredo MAP, Belo MAA, Moraes JRE, Moraes FR. Response of splenic melanomacrophage centers of Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758) to inflammatory stimuli by BCG and foreign bodies. J Appl Ichthyol 2014; 30(5):1001–1006.
7. Marcusso PF, Yunis J, Claudiano GS, Manrique WG, Salvador R, Moraes JRE, Moraes FR. Sodium fluorescein for early detection of skin ulcers in Aeromonas hydrophila infected Piaractus mesopotamicus. Bull Eur Ass Fish Pathol 2014; 34(3):102-106.
8. Amal MNA, Zamri-Saad M. Streptococcosis in tilapia (Oreochromis niloticus): A review. Pertanika. J of Tropic Agricul Sci 2011; 34(2):195-206.
9. Agnew W, Barnes A. Streptococcus iniae: An aquatic pathogen of global veterinary significance and a challenging candidate for reliable vaccination. Vet Microb 2007; 122(1-2):1-15.
10. Haenen O, Evans J y Berthe F. Bacterial infections from aquatic species: potential for and prevention of contact zoonoses. Ver sci tech Off Int Epiz 2013; 32(2):497-507.
11. Guerrero, PMB, León, JP, Valdivia, LM. Producción, comercialización y perspectivas de desarrollo de la acuicultura peruana. Científica 2014; 11(2):118-133.
12. Asencios YO, Sánchez FB, Mendizábal HB, Pusari KH, Alfonso HO, Sayán AM, Figueiredo MAP, Manrique WG, Belo MAA, Chaupe NS. First report of Streptococcus agalactiae isolated from Oreochromis niloticus in Piura, Peru: Molecular identification and histopathological lesions. Aquac Rep 2016; 4:74-79.
13. Manrique WG, da Silva C, de Castro MP, Petrillo TR, Figueiredo MP, de Andrade MA, et al. Expresion of cellular components in granulomatous inflammatory response in Piaractus mesopotamicus Model. PLosONE 2015; 10(3):e0121625.
14. Figueiredo HC, Nobrega L, Leal CA, Pereira U, Mian G. Streptococcus iniae outbreaks in Brazilian Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) farms. Brazil J Microbiol 2012; 43(2):576-580.
15. Salvador R, Eckehardt E, de Freitas J, Leonhadt J, García L, Alves J. Isolation and characterization of Streptococcus spp. Group B. in Nile tilapias (Oreochromis niloticus) reared in hapas nets and earth nurseries in the northern region of Paraná State, Brazil. Ciencia Rural 2005; 35(6):1374-1378.
16. Hernández E, Figueroa J, Iregui C. Streptococcosis on a red tilapia, Oreochromis sp., farm: a case study. J Fish Dis 2009; 32:247-252.
17. Anshary H, Kurniawan RA, Sriwulan S, Ramli R, Baxa DV. Isolation and molecular identification of the etiological agents of streptococcosis in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) cultured in net cages in Lake Sentani, Papua, Indonesia. SpringerPlus 2014;3:627.
18. Facklam R, Elliot J, Shewmaker L y Reingold A. Identification and characterization of sporadic isolates from humans. J Clin Microbiol 2005; 43(2):933-937.
19. Chen CY, Chao CB, Bowser PR. Comparative histopathology of Streptococcus iniae and Streptococcus agalactiae-infected tilapia. Bull Eur Ass Fish Pathol 2007; 27(1):2-9.
20. Bromage ES, Owens L. Infection of barramundi Lates calcarifer with Streptococcus iniae: effects of different troutes of exposure. Dis Aquat Org 2002; 52(3):199–205.
21. Cai SH, Wang B, Lu YS, Jian JC, Wu ZH. Development of loop-mediated isothermal amplification method for rapid detection of Streptococcus iniae, the causative agent of streptococcosis in fish. J Basic Microbiol 2012; 52:116–122.
22. Gibello A, Collins MD, Dominguez L, Fernandez-Garayzabal JF, Richardson PT. Cloning and analysis of the L-lactate utilization genes from Streptococcus iniae. Appl Environ Microbiol 1999; 65(10):4346–4350.
23. Mata AI, Blanco MM, Domínguez L, Fernández-Garayzábal JF, Gibello A, Development of a PCR assay for Streptococcus iniae based on the lactate oxidase (lctO) gene with potential diagnostic value. Vet Microbiol 2004; 101: 109–116.