Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (MAP) en un hato lechero de búfalos en Colombia

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Autores

Brahian Camilo Tuberquia-López https://orcid.org/0000-0003-2782-1362 Felipe Uribe-García https://orcid.org/0000-0003-2773-9027 María Ximena Medrano-Montoya https://orcid.org/0000-0003-2359-3665 Nathalia María del Pilar Correa-Valencia https://orcid.org/0000-0001-8836-8827 Nicolás Fernando Ramírez-Vásquez https://orcid.org/0000-0002-0444-8094 Jorge Arturo Fernández-Silva https://orcid.org/0000-0001-7248-5420

Resumen

Objetivo. Determinar la presencia de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (MAP) mediante métodos serológicos, microbiológicos y moleculares, para genotipar los aislamientos de MAP y explorar factores asociados a la seropositividad a MAP en un hato de búfalos del departamento de Antioquia (Colombia). Materiales y métodos. Se realizó un estudio transversal para analizar muestras fecales y de suero de 21 búfalas adultas asintomáticas mediante cultivo y ELISA, respectivamente. Los cultivos aislados sospechosos se confirmaron mediante PCR de MAP-IS900 (IS900-PCR). El ADN positivo se volvió a analizar mediante PCR cuantitativo de MAP-IS900 (IS900-qPCR), y luego, se subtipificó utilizando unidades repetitivas intercaladas de micobacterias-número variable de repeticiones en tándem (MIRU-VNTR) y repetición de secuencia corta de múltiples locus (MLSSR). Resultados. Al muestreo, la edad promedio de los animales era de 4.7 años, el 90.5% (19/21) eran hembras y el 84.2% (16/19) estaban preñadas. El puntaje promedio de condición corporal fue 4.2 (escala de 1 a 5). La producción de leche promedio fue de 3.5 L/día/animal. No se detectaron animales seropositivos a MAP. Una hembra de los 21 búfalos fue positiva mediante cultivo fecal en la semana seis de incubación y luego se confirmó mediante IS900-PCR. El análisis de subtipado reveló que el aislado de MAP correspondía al genotipo INMV 3 por MIRU-VNTR. Conclusiones. Según el conocimiento de los autores, este es el primer diagnóstico y aislamiento de MAP en búfalos en Colombia y la primera vez que se encuentra un perfil INMV 3 de MAP en esta especie en el país.

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Referencias

1. Fecteau ME. Paratuberculosis in Cattle. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2018; 34(1):209-222. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2017.10.011

2. Carvalho IA, Campos VE, Souza IM, Zanardo LG, Filho JD, Gomes MJ, Moreira MA. Diagnosis of paratuberculosis in cattle: microbiological culture, serology and PCR. Braz J Microbiol. 2012; 43(2):581-585. https://doi.org/10.1590/S1517-83822012000200020

3. Sivakumar P, Tripathi BN, Singh N, Sharma AK. 2006. Pathology of naturally occurring paratuberculosis in water buffaloes (Bubalus bubalis). Vet. Pathol. 2006; 43(4):455-462. http://doi.org//10.1354/vp.43-4-455

4. de Moraes Pereira H, Santos HP, de Oliveira EAA, Rocha TB, Araújo ÍMS, Soares DM, et al. High prevalence of subclinical paratuberculosis in buffaloes (Bubalus bubalis) in Maranhão, Brazil. Braz J Microbiol. 2020; 51:1383–1390. http://doi.org//10.1007/s42770-020-00267-4

5. Singh SV, Singh AV, Singh R, Sharma S, Shukla N, Misra S, et al. Sero-prevalence of bovine Johne’s disease in buffaloes and cattle population of North India using indigenous ELISA kit based on native Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis ‘Bison type’ genotype of goat origin. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2008; 31(5):419-433. http://doi.org//10.1016/j.cimid.2007.06.002

6. Mota RA, Peixoto PV, Yamasaki EM, Medeiros ES, Costa MM, et al. Ocorrência de paratuberculose em búfalos (Bubalus bubalis) em Pernambuco. Pesq. Vet. Bras. 2010; 30(3):237-242. https://doi.org/10.1590/S0100-736X2010000300008

7. Dalto AC, Bandarra PM, Pavarini SP, Boabaid FM, de Bitencourt AP, Gomes MP, et al. Clinical and pathological insights into Johne’s disease in buffaloes. Trop. Anim. Health. Prod. 2012; 44(8):1899-1904. http://doi.org//10.1007/s11250-012-0154-9

8. Desio G, Nizza S, Montagnaro S, Sasso S, De Martino L, Iovane V, et al. Estimated prevalence of Johne’s disease in herd of water buffaloes (Bubalus bubalis) in the province of Caserta. Ital J Anim Sci. 2013; 12:8. https://doi.org/10.4081/ijas.2013.e8

9. Whittington R, Donat K, Weber MF, Kelton D, Nielsen SS, Eisenberg S, et al. Control of paratuberculosis: who, why and how. A review of 48 countries. BMC Vet Res. 2019; 15:198. https://doi.org/10.1186/s12917-019-1943-4

10. ICA. Consolidado nacional por especies. Instituto Colombiano Agropecuaria: Colombia; 2019. https://www.ica.gov.co/areas/pecuaria/servicios/epidemiologia-veterinaria/censos-2016/censo-2018

11. Correa-Valencia NM, García-Tamayo Y, Fernández-Silva JA. Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in Colombia (1924-2016): A review. Rev Colomb Cienc Pecu. 2018; 31(3):165-179. http://dx.doi.org/10.17533/udea.rccp.v31n3a01.

12. IDEAM. Mapa de clasificación climática de Caldas-Lang, Clasificación climática de Lang, 2012/Colombia. Colombia, Bogotá DC: Instituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales (IDEAM); 2012. https://www.datos.gov.co/Ambiente-y-Desarrollo-Sostenible/Clasificaci-n-Clim-tica-Caldas-Lang-2012/3akx-3ph5

13. Fernández-Silva JA, Abdulmawjood A, Bulte M. Diagnosis and molecular characterization of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis from dairy cows in Colombia. Vet Med Int. 2011; 2011:1–12. https://doi.org/10.4061/2011/352561

14. Bull TJ, McMinn EJ, Sidi-Boumedine K, Skull A, Durkin D, Neild P, et al. Detection and verification of Mycobacterium avium subsp paratuberculosis in fresh ileocolonic mucosal biopsy specimens from individuals with and without Crohn’s disease. J Clin Microbiol. 2003; 41(7):2915-2923. http://doi.org//10.1128/JCM.41.7.2915-2923.2003

15. Thibault VC, Grayon M, Boschiroli ML, Willery E, Allix-Béguec C, Stevenson K, et al. Combined multilocus short-sequence-repeat and mycobacterial interspersed repetitive unit-variable-number tandem-repeat typing of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis isolates. J Clin Microbiol. 2008; 46(12):4091-4094. http://doi.org//10.1128/JCM.01349-08

16. Alapati A, Kapa SR, Jeepalyam S, Rangappa SM, Yemireddy KR. Development of the body condition score system in Murrah buffaloes: validation through ultrasonic assessment of body fat reserves. J Vet Sci. 2010; 11(1) 1-8. https://doi.org/10.4142/jvs.2010.11.1.1

17. Fernández-Silva JA, Abdulmawjood A, Akineden O, Bulte M. 2011. Serological and molecular detection of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in cattle of dairy herds in Colombia. Trop Anim Health Prod. 2011; 43(8):1501-1507. http://doi.org//10.1007/s11250-011-9833-1

18. Thibault VC, Grayon M, Boschiroli ML, Hubbans C, Overduin P, Stevenson K, et al. New variable-number tandem-repeat markers for typing Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis and M. avium strains: Comparison with IS900 and IS1245 restriction fragment length polymorphism typing. J Clin Microbiol. 2007; 45(8):2404-2410. http://doi.org//10.1128/JCM.00476-07

19. Amonsin A, Li LL, Zhang Q, Bannantine JP, Motiwala AS, Sreevatsan S, et al. Multilocus short sequence repeat sequencing approach for differentiating among Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis strains 3. J Clin Microbiol. 2004; 42:1694-1702. http://doi.org//10.1128/JCM.42.4.1694-1702.2004

20. Lavers CJ, Dohoo IR, McKenna SL, Keefe GP. Sensitivity and specificity of repeated test results from a commercial milk enzyme-linked immunosorbent assay for detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in dairy cattle. J Am Vet Med Assoc. 2015; 246(2):236-244. http://doi.org//10.2460/javma.246.2.236

21. Nielsen SS, Grønbaek C, Agger JF, Houe H. Maximum-likelihood estimation of sensitivity and specificity of ELISAs and faecal culture for diagnosis of paratuberculosis. Prev Vet Med. 2002; 53(3):191-204. http://doi.org//10.1016/s0167-5877(01)00280-x

22. Fecteau ME, Whitlock RH, Buergelt CD, Sweeney RW. Exposure of young dairy cattle to Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (MAP) through intensive grazing of contaminated pastures in a herd positive for Johne’s disease. Can Vet J. 2010; 51(2):198-200. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2808288/pdf/cvj_02_198.pdf

23. Uy MRD, Cruz JL, Miguel MA, Salinas MBS, Lazaro JV, Mingala CN. Serological and molecular evaluation of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis (Johne’s disease) infecting riverine-type water buffaloes (Bubalus bubalis) in the Philippines. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2018; 61:24-29. http://doi.org//10.1016/j.cimid.2018.11.004

24. de Albuquerque PPF, de Melo RPB, de Farias Brito M, Bovino F, de Souza MA, Lima AMC, et al. First molecular epidemiological study of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in cattle and buffalo from different regions of Brazil. Trop. Anim. Health. Prod. 2018; 50(8):1929-1935. http://doi.org//10.1007/s11250-018-1650-3

25. Fernández-Silva JA, Abdulmawjood A, Akineden O, Bulte M. Genotypes of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis from South American countries determined by two methods based on genomic repetitive sequences. Trop Anim Health Prod. 2012; 44(6):1123-1126. http://doi.org//10.1007/s11250-011-0060-6

26. Fernández-Silva JA, Abdulmawjood A, Akineden O, Bulte M. Molecular epidemiology of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis at a regional scale in Germany. Res Vet Sci. 2012; 93(2):776-782. http://doi.org//10.1016/j.rvsc.2011.12.005

27. Ahlstrom C, Barkema HW, Stevenson K, Zadoks RN, Biek R, Kao R, et al. Limitations of variable number of tandem repeat typing identified through whole genome sequencing of Mycobacterium avium subsp. Paratuberculosis on a national and herd level. BMC Genomics. 2015; 16(1):161. http://doi.org/10.1186/s12864-015-1387-6

28. de Kruijf M, Lesniak ON, Yearsley D, Ramovic E, Coffey A, O’Mahony J. Low genetic diversity of bovine Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis isolates detected by MIRU-VNTR genotyping. Vet Microbiol. 2017; 203:280-285. http://doi.org//10.1016/j.vetmic.2017.03.029

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