Actividad de acetilcolinesterasa y niveles totales de antioxidantes en perros con tumores de mama antes y después de la extirpación quirúrgica
Acetylcholinesterase activity and total antioxidant levels in dogs with mammary tumors before and after surgical removal
Mostrar biografía de los autores
Objetivo. El objetivo de este estudio fue evaluar la actividad de la AChE en sangre total y los niveles de FRAP en muestras de perros con tumores mamarios antes y después de la cirugía, así como la relación entre estas variables con marcadores inmunohistoquímicos de tumores (E-caderina, ki-67 , COX - 2). Materiales y métodos. En este estudio, 13 perros con tumores mamarios se dividieron en dos grupos (A y B). El grupo A estaba formado por perros con tumores menores de 3 cm de diámetro y el grupo B estaba formado por perros con tumor de 3 cm de diámetro o más. La actividad de AChE y los niveles de FRAP se evaluaron antes y después de la cirugía y la inmunohistoquímica se realizó en los tumores. Resultados. La actividad de la AChE aumentó significativamente (p <0,05) en perros con cáncer mamario en comparación con los animales control, y ni la cirugía ni el tamaño tumoral afectaron la actividad de la AChE (p> 0,05). Los niveles de FRAP antes de la cirugía fueron significativamente más bajos (p <0,05) en comparación con los animales control. Además, los niveles de FRAP aumentaron significativamente después de la cirugía en animales del grupo A en comparación con los datos antes de la cirugía, hecho que no se observó en perros del grupo B. La E-cadherina mostró correlación positiva baja con los niveles de FRAP (r = 0,37, valor P = 0,05); COX-2 mostró una moderada correlación positiva significativa con FRAP (r = 0,55, P-valor <0,05); Y la COX-2 mostró una correlación positiva de baja significación con la AChE (r = 0.32, P-valor = 0.01). Conclusiones. AChE y los niveles de antioxidantes se modifican en perros con cáncer de mama. Estas variables están implicadas en diversas funciones fisiológicas, y por lo tanto, pueden estar relacionadas con la patogénesis de la enfermedad.
Visitas del artículo 1517 | Visitas PDF
Descargas
- Cassali GD, Lavalle GE, Ferreira E, Estrela-Lima A. Consensus for the Diagnosis, Prognosis and Treatment of Canine Mammary Tumors. Brazilian. J Vet Pathol 2014; 7(2): 38-69.
- Brunetti B, Sarli G, Preziosi R, Monari I, Benazzi C. E-Cadherin and catenin reduction influence invasion but not proliferation and survival in canine malignant mammary tumors, Vet Pathol 2005; 42(6): 781-787. https://doi.org/10.1354/vp.42-6-781
- Yoshida K, Yoshida S, Choisunirachon N, Saito T, Matsumoto K, Mochizuki M, Nishimura R, Sasaki N, Nakagawa T. The relationship between clinicopathological features and expression of epithelial and mesenchymal markers in spontaneous canine mammary gland tumors. J Vet Med Sci 2014; 76 (10): 1321-1324. https://doi.org/10.1292/jvms.14-0104
- Zuccari DAPC, Pavam MV, Terzian ACB, Pereira RS, Ruiz CM, Andrade JC. Immunohistochemical evaluation of e-cadherin, Ki-67 and PCNA in canine mammary neoplasias: Correlation of prognostic factors and clinical outcome Pesq Vet Bras 2008; 28(4): 207-215.
- Terzian ACB, Zuccari DAPC, Pereira RS, Pavam MV, Ruiz CM, Sueiro FAR, Coelho C. Avaliação da caspase-3 e Ki-67 como marcadores prognósticos nas neoplsias mamárias em cadelas. Braz J Vet Res An Sci 2007; 44 (2): 96-102. https://doi.org/10.11606/issn.1678-4456.bjvras.2007.26647
- Reis AL, Carvalheira J, Schmitt GC, Gärtner F. Immunohistochemical study of the expression of E-cadherin in canine mammary tumors. Vet Rec 2006; 152 (20): 621-624. https://doi.org/10.1136/vr.152.20.621
- Sarli G, Preziosi R, Benazzi C, Castellani G., Marcato PS. Prognostic value of histologic stage and proliferative activity in canine malignant mammary tumors. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation 2007; 14 (1): 25-34. https://doi.org/10.1177/104063870201400106
- Méric J B, Rottey S, Olausse K, Soria J C, Khayat D, Rixe O, Spano, JP. Cyclooxygenase-2 as a target for anticancer drug development. Critic Rev Onc Hematol 2006; 59(1): 51-64. https://doi.org/10.1016/j.critrevonc.2006.01.003
- Stasinopoulos I, Moni N, Bhujwalla ZM. The malignant phenotype of breast cancer cells is reduced by cox-2 silencing. Neoplasia 2008; 10(11): 1163-1169. https://doi.org/10.1593/neo.08568
- Abou-zeid L, Baraka HN. Combating oxidative stress as a hallmark of cancer and aging: Computational modeling and synthesis of phenylene diamine analogs as potential antioxidant. Saudi Pharma J. 2014; 22(3): 264–272. https://doi.org/10.1016/j.jsps.2013.07.009
- Pande D, Negi R, Khanna S, Khanna R, Khanna HD. Vascular endotelial growth factor levels in relation to oxidative damage and antioxidant status in patients with breast cancer. J Breast Cancer 2010, 14(3): 181-184. https://doi.org/10.4048/jbc.2011.14.3.181
- Sharma M, Rajappa M, Satyman A, Sharma A (2010) Oxidant/anti-oxidant dynamics in patients with advanced cervical cancer: Mol Cel Bioch 2010; 341 (1-2): 65-72. https://doi.org/10.1007/s11010-010-0437-2
- Pavlov VA, Tracey KJ. The cholinergic anti-inflammatory pathway. Brain, Behavior Immunity 2005; 19 (1): 493–499. https://doi.org/10.1016/j.bbi.2005.03.015
- Das UN. Acetylcholinesterase and butyrylcholinesterase as markers of low-grade systemic inflammation. Annals Hepatol 2012; 11 (3): 409-411.
- Ruiz-Espejo F, Cabezas-Herrera J, Illana J, Campoy FJ, Vidal CJ. Cholinesterase activity and acetylcholinesterase glycosylation are altered in human breast cancer. Breast Ca Res Treat 2002; 72(1): 11-22. https://doi.org/10.1023/A:1014904701723
- Ye X, Zhang C, Chen Y, Zhou T. Upregulation of acetilcolinesterase mediated by p53 contributes to cisplatin-induced apoptosis in human breast cancer cell. J Cancer 2015; 6 (1): 48-53. https://doi.org/10.7150/jca.10521
- Worek, F, Mast U, Kiderlen D, Diepold C, Eyer P. Improved determination of acetylcholinesterase activity in human whole blood. Clin Chim Acta 1999; 288 (1): 73–90. https://doi.org/10.1016/S0009-8981(99)00144-8
- Benzie IFF, Strain JJ. The Ferric Reducing Ability of Plasma (FRAP) as a Measure of ''Antioxidant Power'': The FRAP Assay. Anal Bioch 1999; 239 (1): 70–76. https://doi.org/10.1006/abio.1996.0292
- Martinez-Moreno P, Nieto-Céron S, Torres-Lanzas J, Ruiz-Espejo F, Tovar-Zapata I, Martínez-Hernández P, Rodríguez-López JN, Vidal CJ, Cabezas-Herrera J. Cholinesterase activity of human lung tumours varies according to their histological classification. Carcinogenesis 2006; 27(3): 429-436. https://doi.org/10.1093/carcin/bgi250
- Zanini D, Schmatz R, Pelinson L P, Pimentel VC, Costa P, Cardoso AM, Martins CC, Schetinger CC, Baldissareli J, Araújo MC, Oliveira L, Chiesa J, Morsch VM, Leal DBR, Schetinger MRC. Ectoenzymes and cholinesterase activity and biomarkers of oxidative stress in patients with lung cancer. Mol Cell Bioch 2013; 374(1): 137-148. https://doi.org/10.1007/s11010-012-1513-6
- Pohanka M. Inhibitors of acetylcholinesterase and butyrylcholinesterase meet immunity, Int J Mol Sci 2014; 15: 9809-9825. https://doi.org/10.3390/ijms15069809
- Pires I, Garcia A, Prada J, Queiroga FL. COX-1 and COX-2 expression in canine cutaneous, oral and ocular melanocytic tumours. J Comp Pathol 2010; 143 (2-3): 142-149. https://doi.org/10.1016/j.jcpa.2010.01.016
- Lavalle GE, Campos CB, Bertagnolli AC, Cassali GD. Canine malignant mammary gland neoplasias with advance clinical staging treated with carboplatin and ciclooxygenase inhibitors. In vivo 2012; 26(1): 375-379.
- Lavalle GE, Bertagnolli AC, Tavares WLF, Cassali GD. Cox-2 expression in canine mammary carcinomas: correlation with angiogenesis and overall survival. Vet Pathol 2009, 46 (6): 1275-1280. https://doi.org/10.1354/vp.08-VP-0226-C-FL
- Ferreira E, Gobbi H, Saraiva B S, Cassali G D. Histological and immunohistochemical identification of atypical ductal mammary hyperplasia as a preneoplastic marker in dogs. Vet Pathol 2012; 49(2): 322-329. https://doi.org/10.1177/0300985810396105
- Serafini M, Jakszyn P, Luja´n-Barroso L, Agudo A. Dietary total antioxidant capacity and gastric cancer risk in the European prospective investigation into cancer and nutrition study. Int J Cancer 2012; 131 (4): 544-554. https://doi.org/10.1002/ijc.27347
- Machado V, Da Silva AS, Schafer AS, Aires AR. Relationship between oxidative stress and pathological findings in abomasum of infected lambs by Haemonchus contortus. Pathol Res Pratic 2014; 210 (12): 812-817. https://doi.org/10.1016/j.prp.2014.09.006
- Evans M, Dizdaroglu D; Cooke M, Marcus S. Oxidative DNA damage: induction, repair and significance. Mut Res 2004; 567(1): 1-61. https://doi.org/10.1016/j.mrrev.2003.11.001
- Singh G, Maulik S K, Jaiswal A, Kumar P, Parshad R. Effect on antioxidant levels in patients of breast carcinoma during neoadjuvant chemotherapy and mastectomy. Malaysian J Med Sci 2010, 17(2): 24-28.
- Da Silveira, R A, Hermes C L, Almeida T C, Bochi G V, De Bona KS, Moretto MB, Moresco RN. Ischemia-modified albumin and inflammatory biomarkers in patients with prostate cancer. Clin Lab 2014; 60(10): 1703-1708. https://doi.org/10.7754/Clin.Lab.2014.131018