Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Evaluación de medicamentos homeopáticos en la supervivencia y respuesta antioxidante del camarón blanco Litopenaeus vannamei infectado con Vibrio parahaemolyticus

Assessment of homeopathic medicines on survival and antioxidant response in white shrimp Litopenaeus vannamei



Cómo citar
Mazón-Suástegui, J., García-Bernal, M., Avilés-Quevedo, M. A., Campa-Córdova, Ángel, Salas-Leiva, J., & Abasolo-Pacheco, F. (2018). Evaluación de medicamentos homeopáticos en la supervivencia y respuesta antioxidante del camarón blanco Litopenaeus vannamei infectado con Vibrio parahaemolyticus. Revista MVZ Córdoba, 23(3), 6850-6859. https://doi.org/10.21897/rmvz.1373

Dimensions
PlumX
José Mazón-Suástegui
Milagro García-Bernal
María Araceli Avilés-Quevedo
Ángel Campa-Córdova
Joan Salas-Leiva
Fernando Abasolo-Pacheco

Objetivo. Evaluar el efecto de medicamentos homeopáticos sobre la supervivencia y actividad de la enzima superóxido dismutasa (SOD) del camarón Litopenaeus vannamei sometido a infección con Vibrio parahamolyticus. Materiales y Métodos. Se determinó la dosis letal media (DL50) para la cepa patógena en juveniles de L. vannamei, bajo los método de inmersión (Inm), inyección (Iny) e incisión + inmersión (Inc+Inm).Luego el efecto de cuatro medicamentos homeopáticos sobre juveniles de L. vannamei retados con Vibrio parahaemolyticus fue evaluado usando el índice la supervivencia y la actividad SOD. Se aplicaron cuatro tratamientos: (1) Mezcla CIB®-HOM Heel-Mix (TH1), constituido por igual proporción v/v, de Cyme-Heel®, Gal-Heel®, Hepa-Heel®, Mucs-Heel® y Chol-Heel®; (2) Mezcla CIB®-HOM Pav-Mix (TH2), constituido por igual proporción v/v de Passiflora incarnata, Valeriana officinalis, Zincum valerianicum e Ignatia amara (Similia®); (3) Heel-Mix/Pav-Mix (TH3) constituido por una combinación 1:1 v/v de los tratamientos TH1 y TH2, y (4) ViT-Mix (TH4), constituido por Vidatox®, y un control (no tratado/infectado). Resultados. Al aplicar los método Inm, Iny e Inc+Inm la DL50 fue de 0.9 x 106; 0.6 x 106 y 0.5 x 106 UFC.mL-1, respectivamente. Los camarones tratados con TH3 y TH4 presentaron una mayor actividad de SOD con respecto al grupo control (p<0.05). Al final del reto, los grupos TH2, TH3 y TH4 tuvieron una supervivencia mayor a la del grupo control (p<0.05). Conclusiones. Los tratamientos homeopáticos (TH3 y TH4), aumentaron la actividad de la enzima SOD y la supervivencia en juveniles de L. vannamei, retados con V. parahaemolyticus. Esto sugiere que los tratamientos homeopáticos empleados tienen potencial como alternativa para el control de V. parahaemolyticus y sus enfermedades asociadas, incluido el síndrome de mortalidad temprana en el cultivo del camarón


Visitas del artículo 2902 | Visitas PDF


Descargas

Los datos de descarga todavía no están disponibles.
  1. Valdez G, Díaz F, Re AD, Sierra E. Efecto de la salinidad sobre la fisiología energética del camarón blanco Litopenaeus vannamei (Boone). Hidrobiológica 2008; 18(2):105-115.
  2. Soto-Rodriguez SA, Gomez-Gil B, Lozano-Olvera R, Betancourt-Lozano M, Morales-Covarrubias MS 2015. Field and experimental evidence of Vibrio parahaemolyticus as the causative agent of acute hepatopancreatic necrosis disease (AHPND) of cultured shrimp (Litopenaeus vannamei) in northwestern Mexico. Appl Environ Microbiol. 81(5): 1689-1699. https://doi.org/10.1128/AEM.03610-14
  3. Schryver PD, Defoirdt T, Sorgeloos P. Early mortality syndrome outbreaks: a microbial management issue in shrimp farming? PLoS Pathog 2014; 10(4): e1003919 https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003919
  4. Newaj-Fyzul A, Austin B. Probiotics, immunostimulants, plant products and oral vaccines, and their role as feed supplements in the control of bacterial fish diseases. J Fish Dis 2015; 38(11):937-955. https://doi.org/10.1111/jfd.12313
  5. Lakshmi B, Viswanath B, Sai Gopal DVR. Probiotics as antiviral agents in shrimp aquaculture. J Pathog. 2013; Article ID 424123.
  6. Standen BT, Rawling MD, Davies SJ, Castex M, Foey A, Gioacchini G. Probiotic Pediococcus acidilactici modulates both localised intestinal- and peripheral-immunity in tilapia (Oreochromis niloticus). Fish Shellfish Immun 2013; 35(4):1097-1104. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2013.07.018
  7. Ortiz-Cornejo NL, Tovar-Ramírez D, Abasolo-Pacheco F, Mazón-Suástegui JM. Homeopatía, una alternativa para la acuicultura. Rev Med Homeopat 2017; 10(1):18-24. https://doi.org/10.1016/j.homeo.2017.04.006
  8. Khuda-Bukhsh AR, Pathak S. Homeopathic drug discovery: theory update and methodological aspect. Expert Opinion on Drug Discovery 2008; 3(8):979-990. https://doi.org/10.1517/17460441.3.8.979
  9. Vockeroth WG. Veterinary homeopathy: an overview. The Can Vet J 1999; 40:592.
  10. Siena CE, Natali MRM, Braccini GL, Oliveira AC, Ribeiro RP, Vargas L. Effect of core homeopathic homeopatila 100® in productive efficiency of fingerlings reverted from Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Semina: Ciênc Agrár 2010; 31(4):985–994. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2010v31n4p985
  11. Luis-Villase-or IE, Voltolina D, Gomez-Gil B, Ascencio F, Campa-Córdova ÁI, Audelo-Naranjo JM, Zamudio-Armenta OO. Probiotic modulation of the gut bacterial community of juvenile Litopenaeus vannamei challenged with Vibrio parahaemolyticus CAIM 170. Lat Am J of Aquat Res 2015; 43(4):766-775.
  12. Takahashi Y, Itami T, Kondo M, Maeda M, Fujii R, Tomonaga S, Supamattaya K., Boonayaratpalin S. Electron microscopic evidence of bacilliform virus infection in kuruma shrimp (Penaeus japonicus). Fish Pathology 1994; 29:121-125. https://doi.org/10.3147/jsfp.29.121
  13. Roque A, Gómez-Gil B, Guerra Flores AL. Standardization of three techniques for experimental Vibrio infections in the marine shrimp Penaeus vannamei. In Flegel TW (ed) Advances in shrimp biotechnology. National Center for Genetic Engineering and Biotechnology, Bangkok. 1998.
  14. Finney DJ. Probit analysis: a statistical treatment of the sigmoid response curve. 2nd edn. Cambridge University Press; Cambridge: 1952.
  15. Dudonné S, Vitrac X, Coutière P, Woillez M, Mérillon JM. Comparative study of antioxidant properties and total phenolic content of 30 plant extracts of industrial interest using DPPH, ABTS, FRAP, SOD, and ORAC assays. J Agric Food Chem 2009; 57(5):1768-1774. https://doi.org/10.1021/jf803011r
  16. Mazón-Suástegui JM, García-Bernal M, Saucedo PE, Campa-Córdova Á, Abasolo-Pacheco F. Homeopathy outperforms antibiotics treatment in juvenile scallop Argopecten ventricosus: effects on growth, survival, and immune response. Homeopathy 2017; 106(1):18-26. https://doi.org/10.1016/j.homp.2016.12.002
  17. Merlini LS, Vargas L, Piau R, Ribeiro PR, Merlini NB. Effects of a homeopathic complex on the performance and cortisol levels in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Homeopathy 2014; 103:139–142. https://doi.org/10.1016/j.homp.2013.08.005
  18. Gómez B, Roque A, Guerra AL. (). Enfermedades Infecciosas más comunes en la camaronicultura en México y el impacto del uso de antimicrobianos. Instituto de Ciencias del Mar y Limnología; México: 2001.
  19. Saulnier D, Haffner P, Goarant C, Levy P, Ansquer D. Experimental infection models for shrimp vibriosis studies: a review. Aquaculture 2000; 191:133-144. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(00)00423-3
  20. Aguirre-Guzmán G, Sánchez-Martínez JG, Pérez-Casta-eda R, Palacios-Monzón A, Trujillo-Rodríguez T, De La Cruz-Hernández NI. Pathogenicity and Infection Route of Vibrio parahaemolyticus in American White Shrimp, Litopenaeus vannamei. J World Aquac Soc 2010; 41: 464–470. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2010.00388.x
  21. Lemaitre B, Hoffmann J. The host defense of Drosophila melanogaster. Annu Rev Immunol 2007; 25:697-743. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.25.022106.141615
  22. Fridovich I. Oxygen toxicity: a radical explanation. J Exp Biol 1998; 201:1203-1209.
  23. Franco, R., Martín, L., Arenal, A., Santiesteban, D., Sotolongo, J., Cabrera, H., Castillo, N. M. Evaluation of two probiotics used during farm production of white shrimp Litopenaeus vannamei (Crustacea: Decapoda). Aquac Res 2017; 48(4):1936-1950. https://doi.org/10.1111/are.13031
  24. Liu, G., Zhu, S., Liu, D., Guo, X., Ye, Z. Effects of stocking density of the white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone) on immunities, antioxidant status, and resistance against Vibrio harveyi in a biofloc system. Fish Shellfish Immun 2017; 67:19-26. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.05.038
  25. Díaz-García A, Morier-Díaz L, Frión-Herrera Y, Rodríguez-Sánchez H, Caballero-Lorenzo Y, Mendoza-Llanes D, Riquenes-Garlobo Y, Fraga-Castro JA. In vitro anticancer effect of venom from Cuban scorpion Rhopalurus junceus against a panel of human cancer cell lines. J Venom Res 2013; 4:5-12.
  26. Díaz A, Morier L, Rodríguez H, Caballero Y. Citotoxicidad del veneno del escorpión cubano Rhopalurus junceus y sus fracciones sobre líneas celulares tumorales humanas. LABIOFAM 2010; 1:12-18.
  27. Hernández Betancourt O, Casado Hernández I, Iglesias Huerta E, Ramírez Labrada A, Del Risco Ramos J, Rodríguez Pargas A. Evaluación de la toxicidad in vitro del veneno del alacrán Rhopalurus junceus a través de un ensayo celular. Rev Cubana de Invest Bioméd 2009; 28(1):1-11.
  28. Akazawa N, Eguchi M. Environmental trigger for EMS/ AHPNS identified in Agrobest shrimp ponds. Glob Aquacult Advocate 2013; 4:16-17.
  29. Hoanh DTH, Phu TQ, Phuong NT, Tuan PA. Ongoing Vietnam studies find Vibrio with phage transmits EMS/AHPNS. Glob Aquacult Advocate 2013; 4:22-23.

Sistema OJS 3.4.0.3 - Metabiblioteca |