Primera evidencia de Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Monogenea: Ancyrocephalidae) en cultivos de Oreochromis spp. de Ecuador

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Lenin Cáceres-Farías
Yanis Cruz-Quintana
Leonela Griselda Muñoz-Chumo
Ana María Santana-Piñeros
Resumen

Objetivo. Evidenciar la presencia de dos especies de monogeneos del género Cichlidogyrus que causan daño al tejido de las branquias, en tilapias (Oreochromis spp.) cultivadas en Ecuador. Materiales y métodos. Las branquias se colocaron en una caja Petri, se le adicionó agua a punto de ebullición para que los parásitos se relajen, y posteriormente se fijaron en formalina al 4%. Las muestras fueron revisadas en un microscopio estereoscopio. Los parásitos fueron contados y preservados en etanol al 70% para su identificación taxonómica según sus características morfológicas. Los parámetros de infección (prevalencia, abundancia e intensidad medias) fueron calculados para cada especie de parásito. Para la descripción de daños histológicos, fragmentos de branquias parasitadas fueron fijados en formalina neutra al 10% y procesado mediante la técnica histológica de inclusión en parafina. Resultados. Cichlidogyrus sclerosus mostró los parámetros de infección más altos, prevalencia de 65%, abundancia media de 24.24 ± 68.62 e intensidad media de 37.62 ± 82.93. Cychlidogyrus dossoui fue observada en una prevalencia de 4.5%, abundancia media de 0.13 ± 0.66 e intensidad media de 3 ± 1.41. Las dos especies causaron hiperplasia en las lamelas. Conclusiones. Este estudio constituye el primer reporte de infestación por Cichlidogyrus sclerosus y C. dossoui en sistemas de cultivos de tilapias del Ecuador.

Palabras clave

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Biografía del autor/a / Ver

Lenin Cáceres-Farías, Universidad Técnica de Manabí, Ecuador

Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.
2 AquaCEAL Corporation, Urb. Las Palmeras, Av. Capitán Byron Palacios y
General Quisquis, Santo Domingo de los Colorados, Ecuador.

Yanis Cruz-Quintana, Universidad Técnica de Manabí, Ecuador

Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.

Leonela Griselda Muñoz-Chumo, Universidad Técnica de Manabí, Ecuador

1 Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.

3 Universidad Técnica de Manabí, Maestría de Investigación en
Acuicultura, Bahía de Caráquez, Manabí, Ecuador.

Ana María Santana-Piñeros, Universidad Técnica de Manabí, Ecuador

Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.

Referencias / Ver

Wilson JR, Saunders RJ, Hutson KS. Parasites of the invasive tilapia Oreochromis mossambicus: evidence for co-introduction. Aquat Invasions. 2019; 14(2):332–349. https://www.reabic.net/aquaticinvasions/2019/AI_2019_Wilson_etal.pdf

Paredes-Trujillo A, Velázquez-Abunader I, Torres-Irineo E, Romero D, Vidal-Martínez VM. Geographical distribution of protozoan and metazoan parasites of farmed Nile tilapia Oreochromis niloticus (L.) (Perciformes: Cichlidae) in Yucatán, Mexico. Parasit Vectors. 2016; 9(66). https://doi.org/10.1186/s13071-016-1332-9

Soler-Jiménez LC, Paredes-Trujillo AI, Vidal-Martínez VM. Helminth parasites of finfish commercial aquaculture in Latin America. J Helminthol. 2017; 91(2):110–136. https://doi.org/10.1017/S0022149X16000833

Gonzales-Fernández JG. Parasitofauna of tilapia cause mortalities in fingerlings in two fishfarms, Lima, Peru. Neotrop Helminthol. 2012; 6(2):219–229. https://sisbib.unmsm.edu.pe/BVRevistas/neohel/v6n2/pdf/a08v6n2.pdf

Jacome J, Quezada C, Sánchez O, Pérez JE, Nirchio M. Tilapia en Ecuador: paradoja entre la producción acuícola y la protección de la biodiversidad ecuatoriana. Rev peru de biol. 2019; 26(4):543–550. http://dx.doi.org/10.15381/rpb.v26i4.16343

FAO. (2020). Fisheries Division, Statistics and information Branch. FishStatJ: Universal software for fishery statistical time series. Copyright 2020. http://www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/es

Pariselle A, Euzet L. Systematic revision of dactylogyridean parasites (Monogenea)from cichlid fishes in Africa, the Levant and Madagascar. Zoosystema 2009; 31(4):849-898. https://doi.org/10.5252/z2009n4a6

Bush AO, Lafferty KD, Lotz JM, Shostak AW. Parasitology Meets Ecology on Its Own Terms: Margolis et al. Revisited. J Parasitol. 1997; 83(4):575-583. https://www.doi.org/10.2307/3284227

Wolf J, Baumgartner W, Blazer V, Camus AC, Engelhardt JA, Fournie JW, et al. Non-lesions, misdiagnoses, missed diagnoses, and other interpretive challenges in fish histopathology studies: a guide for investigators, authors, reviewers, and readers. Toxicol Pathol. 2014; 43: 297–325. https://www.doi.org/10.1177/0192623314540229

Steckert LD, Cardoso L, Jerônimo GT, Benites S, Martins ML. Investigation of farmed Nile tilapia health through histopathology. Aquaculture. 2018; 486:161–169. https://www.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.12.021

Douellou L. Monogeneans of the genus Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Dactylogyridae: Ancyrocephalinae) from cichlid fishes of Lake Kariba (Zimbabwe) with descriptions of five new species. Syst Parasitol. 1993; 25:159–186. https://www.doi.org/10.1007/BF00007007

Madanire-Moyo GN, Matla MM, Olivier PAS, Luus-Powell WJ. Population dynamics and spatial distribution of monogeneans on the gills of Oreochromis mossambicus (Peters, 1852) from two lakes of the Limpopo River System, South Africa. J Helminthol. 2011; 85(2):146–152. https://www.doi.org/10.1017/S0022149X10000301

Madanire-Moyo GN, Luus-Powell WJ, Olivier PA. Diversity of metazoan parasites of the Mozambique tilapia, Oreochromis mossambicus (Peters, 1852), as indicators of pollution in the Limpopo and Olifants river systems. OJVR. 2012; 79:1–9. https://doi.org/10.4102/ojvr.v79i1.362

Pariselle A, Bitja Nyom AR, Bilong Bilong C. Checklist of the ancyrocephalids (Monogenea) parasitizing Tilapia species in Cameroon, with the description of three new species. Zootaxa. 2013; 3599, 78–86. https://doi.org/10.11646/zootaxa.3599.1.7

Fannes W, Vanhove MPM, Huyse T. Redescription of Cichlidogyrus tiberianus Paperna, 1960 and C. dossoui Douëllou, 1993 (Monogenea: Ancyrocephalidae), with special reference to the male copulatory organ. Syst Parasitol. 2017; 94(1):133–44. https://www.doi.org/10.1007/s11230-016-9685-1

Paperna I, Thurston JP. (1969) Monogenetic trematodes collected from cichlid fish in Uganda; including the description of five new species of Cichlidogyrus. Rev Zool afric, 1969; 79(1-2):15-33. https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/19700802719

Aguirre-Fey D, Benítez-Villa GE, Pérez-Ponce de León G, Rubio-Godoy M. Population dynamics of Cichlidogyrus spp. and Scutogyrus sp. (Monogenea) infecting farmed tilapia in Veracruz, México. Aquaculture. 2015; 443:11–15. https://www.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.03.004

Maneepitaksanti W, Nagasawa K. Monogeneans of Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Dactylogyridae), gill parasites of tilapias, from Okinawa Prefecture, Japan. Biogeography 2012; 14:111–119. https://ir.lib.hiroshima-u.ac.jp/files/public/3/34082/20141016200842209265/Biogeography_14_111.pdf

Jiménez R. Enfermedades de tilapia en cultivo. Cámara Ecuatoriana del Libro, Núcleo de Pichincha; 2007. https://isbn.cloud/9789942010735/enfermedades-de-tilapia-en-cultivo/

Kritsky DC, Thatcher VE. Monogenetic trematodes (Monopisthocotylea: Dactylogyridae) from freshwater fishes of Colombia, South America. J Helminthol, 1974; 48:59-66. https://doi.org/10.1017/S0022149X00022604

Messu Mandeng FDM, Bilong Bilong CF, Pariselle A, Vanhove MPM, Bitja Nyom AR, Agnèse J-F. A phylogeny of Cichlidogyrus spp. (Monogenea, Dactylogyridae) clarifies a host-switch between fish families and reveals an adaptive component to attachment organ morphology of this parasite genus. Parasit Vectors. 2015; 8:582. https://doi.org/10.1186/s13071-015-1181-y

Vignon M, Pariselle A, Vanhove MPM. Modulatory in attachment organs of African Cichlidogyrus (Platyhelminthes: Monogenea: Ancyrocephalidae) reflects phylogeny rather tan host specificity or geografic distribution. Biol J Linn Soc. 2011; 102:694-706. https://doi.org/10.1111/j.1095-8312.2010.01607.x

Ojwala RA, Otachi EO, Kitaka NK. Effect of water quality on the parasite assemblages infecting Nile tilapia in selected fish farms in Nakuru County, Kenya. Parasitol Res. 2018; 117(11):3459-3471. https://doi.org/10.1007/s00436-018-6042-0

Akoll P, Fioravanti ML, Konecny R, Schiemer F. Infection dynamics of Cichlidogyrus tilapiae and C. sclerosus (Monogenea, Ancyrocephalinae) in Nile tilapia (Oreochromis niloticus L) from Uganda. J Helminthol. 2011; 86(3):302-310. https://doi.org/10.1017/S0022149X11000411

Ibrahim MM. Variation in parasite infracommunies of Tilapia zillii in relation to some biotic and abiotic factors. Int J Zool. 2012; 8(2):59-70. https://doi.org/10.3923/ijzr.2012.59.70

Paredes-Trujillo A, Velázquez-Abunader I, Papiol V, del Rio-Rodríguez RE, Vidal-Martínez VM. Negative effect of ectoparasite burdens on the condition factor from farmed tilapia Oreochromis niloticus in the Yucatan, Mexico. Vet Parasitol. 2021; 292:109393. https://www.doi.org/10.1016/j.vetpar.2021.109393

Igeh PC, Avenant-Oldewage A. Pathological effects of Cichlidogyrus philander Douëllou, 1993 (Monogenea, Ancyrocephalidae) on the gills of Pseudocrenilabrus philander (Weber, 1897) (Cichlidae). J Fish Dis. 2020; 43(2):177–184. https://www.doi.org/10.1111/jfd.13121

Martins ML, Cardoso L, Marchiori N, Benites de Pádua S. Protozoan infections in farmed fish from Brazil: diagnosis and pathogenesis. Rev. Bras Parasitol Vet. 2015; 24(1):1–20. https://doi.org/10.1590/S1984-29612015013

El-Mansy A, Hamada S, Hasan S, El-Sarnagawy D. Histopathology of farmed freshwater fish infested with different helminthes. Egypt J Aquat Biol & Fish. 2011; 15(1):1-13. https://doi.org/10.21608/EJABF.2011.2072

Alim DIM, Matter HMA. Histopathological alteration induced in gills of juvenile Nile tilapia Oreochromis niloticus upon exposure to two bio-pesticides. Int J Fish Aquat. Stud. 2015; 2(5):80–83. https://www. fisheriesjournal.com/archives/?year=201 5&vol=2&issue=5&part=B&ArticleId=454

Citado por