Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Primera evidencia de Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Monogenea: Ancyrocephalidae) en cultivos de Oreochromis spp. de Ecuador

First evidence of Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Monogenea: Ancyrocephalidae) in Oreochromis spp. cultures from Ecuador



Cómo citar
Cáceres-Farías, L. ., Cruz-Quintana, Y., Muñoz-Chumo, L. G. ., & Santana-Piñeros, A. M. . (2022). Primera evidencia de Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Monogenea: Ancyrocephalidae) en cultivos de Oreochromis spp. de Ecuador. Revista MVZ Córdoba, 27(2), e2402. https://doi.org/10.21897/rmvz.2402

Dimensions
PlumX
Licencia
Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Lenin Cáceres-Farías
Yanis Cruz-Quintana
Leonela Griselda Muñoz-Chumo
Ana María Santana-Piñeros

Lenin Cáceres-Farías,

Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.
2 AquaCEAL Corporation, Urb. Las Palmeras, Av. Capitán Byron Palacios y
General Quisquis, Santo Domingo de los Colorados, Ecuador.


Yanis Cruz-Quintana,

Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.


Leonela Griselda Muñoz-Chumo,

1 Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.

3 Universidad Técnica de Manabí, Maestría de Investigación en
Acuicultura, Bahía de Caráquez, Manabí, Ecuador.


Ana María Santana-Piñeros,

Universidad Técnica de Manabí. Facultad de Ciencias Veterinarias.
Departamento de Acuicultura, Pesca y Recursos Naturales Renovables.
Grupo de Investigación en Sanidad Acuícola, Inocuidad y Salud
Ambiental. Bahía de Caráquez, Ecuador.


Objetivo. Evidenciar la presencia de dos especies de monogeneos del género Cichlidogyrus que causan daño al tejido de las branquias, en tilapias (Oreochromis spp.) cultivadas en Ecuador. Materiales y métodos. Las branquias se colocaron en una caja Petri, se le adicionó agua a punto de ebullición para que los parásitos se relajen, y posteriormente se fijaron en formalina al 4%. Las muestras fueron revisadas en un microscopio estereoscopio. Los parásitos fueron contados y preservados en etanol al 70% para su identificación taxonómica según sus características morfológicas. Los parámetros de infección (prevalencia, abundancia e intensidad medias) fueron calculados para cada especie de parásito. Para la descripción de daños histológicos, fragmentos de branquias parasitadas fueron fijados en formalina neutra al 10% y procesado mediante la técnica histológica de inclusión en parafina. Resultados. Cichlidogyrus sclerosus mostró los parámetros de infección más altos, prevalencia de 65%, abundancia media de 24.24 ± 68.62 e intensidad media de 37.62 ± 82.93. Cychlidogyrus dossoui fue observada en una prevalencia de 4.5%, abundancia media de 0.13 ± 0.66 e intensidad media de 3 ± 1.41. Las dos especies causaron hiperplasia en las lamelas. Conclusiones. Este estudio constituye el primer reporte de infestación por Cichlidogyrus sclerosus y C. dossoui en sistemas de cultivos de tilapias del Ecuador.


Visitas del artículo 530 | Visitas PDF


Descargas

Los datos de descarga todavía no están disponibles.
  1. Wilson JR, Saunders RJ, Hutson KS. Parasites of the invasive tilapia Oreochromis mossambicus: evidence for co-introduction. Aquat Invasions. 2019; 14(2):332–349. https://www.reabic.net/aquaticinvasions/2019/AI_2019_Wilson_etal.pdf
  2. Paredes-Trujillo A, Velázquez-Abunader I, Torres-Irineo E, Romero D, Vidal-Martínez VM. Geographical distribution of protozoan and metazoan parasites of farmed Nile tilapia Oreochromis niloticus (L.) (Perciformes: Cichlidae) in Yucatán, Mexico. Parasit Vectors. 2016; 9(66). https://doi.org/10.1186/s13071-016-1332-9
  3. Soler-Jiménez LC, Paredes-Trujillo AI, Vidal-Martínez VM. Helminth parasites of finfish commercial aquaculture in Latin America. J Helminthol. 2017; 91(2):110–136. https://doi.org/10.1017/S0022149X16000833
  4. Gonzales-Fernández JG. Parasitofauna of tilapia cause mortalities in fingerlings in two fishfarms, Lima, Peru. Neotrop Helminthol. 2012; 6(2):219–229. https://sisbib.unmsm.edu.pe/BVRevistas/neohel/v6n2/pdf/a08v6n2.pdf
  5. Jacome J, Quezada C, Sánchez O, Pérez JE, Nirchio M. Tilapia en Ecuador: paradoja entre la producción acuícola y la protección de la biodiversidad ecuatoriana. Rev peru de biol. 2019; 26(4):543–550. http://dx.doi.org/10.15381/rpb.v26i4.16343
  6. FAO. (2020). Fisheries Division, Statistics and information Branch. FishStatJ: Universal software for fishery statistical time series. Copyright 2020. http://www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/es
  7. Pariselle A, Euzet L. Systematic revision of dactylogyridean parasites (Monogenea)from cichlid fishes in Africa, the Levant and Madagascar. Zoosystema 2009; 31(4):849-898. https://doi.org/10.5252/z2009n4a6
  8. Bush AO, Lafferty KD, Lotz JM, Shostak AW. Parasitology Meets Ecology on Its Own Terms: Margolis et al. Revisited. J Parasitol. 1997; 83(4):575-583. https://www.doi.org/10.2307/3284227
  9. Wolf J, Baumgartner W, Blazer V, Camus AC, Engelhardt JA, Fournie JW, et al. Non-lesions, misdiagnoses, missed diagnoses, and other interpretive challenges in fish histopathology studies: a guide for investigators, authors, reviewers, and readers. Toxicol Pathol. 2014; 43: 297–325. https://www.doi.org/10.1177/0192623314540229
  10. Steckert LD, Cardoso L, Jerônimo GT, Benites S, Martins ML. Investigation of farmed Nile tilapia health through histopathology. Aquaculture. 2018; 486:161–169. https://www.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.12.021
  11. Douellou L. Monogeneans of the genus Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Dactylogyridae: Ancyrocephalinae) from cichlid fishes of Lake Kariba (Zimbabwe) with descriptions of five new species. Syst Parasitol. 1993; 25:159–186. https://www.doi.org/10.1007/BF00007007
  12. Madanire-Moyo GN, Matla MM, Olivier PAS, Luus-Powell WJ. Population dynamics and spatial distribution of monogeneans on the gills of Oreochromis mossambicus (Peters, 1852) from two lakes of the Limpopo River System, South Africa. J Helminthol. 2011; 85(2):146–152. https://www.doi.org/10.1017/S0022149X10000301
  13. Madanire-Moyo GN, Luus-Powell WJ, Olivier PA. Diversity of metazoan parasites of the Mozambique tilapia, Oreochromis mossambicus (Peters, 1852), as indicators of pollution in the Limpopo and Olifants river systems. OJVR. 2012; 79:1–9. https://doi.org/10.4102/ojvr.v79i1.362
  14. Pariselle A, Bitja Nyom AR, Bilong Bilong C. Checklist of the ancyrocephalids (Monogenea) parasitizing Tilapia species in Cameroon, with the description of three new species. Zootaxa. 2013; 3599, 78–86. https://doi.org/10.11646/zootaxa.3599.1.7
  15. Fannes W, Vanhove MPM, Huyse T. Redescription of Cichlidogyrus tiberianus Paperna, 1960 and C. dossoui Douëllou, 1993 (Monogenea: Ancyrocephalidae), with special reference to the male copulatory organ. Syst Parasitol. 2017; 94(1):133–44. https://www.doi.org/10.1007/s11230-016-9685-1
  16. Paperna I, Thurston JP. (1969) Monogenetic trematodes collected from cichlid fish in Uganda; including the description of five new species of Cichlidogyrus. Rev Zool afric, 1969; 79(1-2):15-33. https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/19700802719
  17. Aguirre-Fey D, Benítez-Villa GE, Pérez-Ponce de León G, Rubio-Godoy M. Population dynamics of Cichlidogyrus spp. and Scutogyrus sp. (Monogenea) infecting farmed tilapia in Veracruz, México. Aquaculture. 2015; 443:11–15. https://www.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.03.004
  18. Maneepitaksanti W, Nagasawa K. Monogeneans of Cichlidogyrus Paperna, 1960 (Dactylogyridae), gill parasites of tilapias, from Okinawa Prefecture, Japan. Biogeography 2012; 14:111–119. https://ir.lib.hiroshima-u.ac.jp/files/public/3/34082/20141016200842209265/Biogeography_14_111.pdf
  19. Jiménez R. Enfermedades de tilapia en cultivo. Cámara Ecuatoriana del Libro, Núcleo de Pichincha; 2007. https://isbn.cloud/9789942010735/enfermedades-de-tilapia-en-cultivo/
  20. Kritsky DC, Thatcher VE. Monogenetic trematodes (Monopisthocotylea: Dactylogyridae) from freshwater fishes of Colombia, South America. J Helminthol, 1974; 48:59-66. https://doi.org/10.1017/S0022149X00022604
  21. Messu Mandeng FDM, Bilong Bilong CF, Pariselle A, Vanhove MPM, Bitja Nyom AR, Agnèse J-F. A phylogeny of Cichlidogyrus spp. (Monogenea, Dactylogyridae) clarifies a host-switch between fish families and reveals an adaptive component to attachment organ morphology of this parasite genus. Parasit Vectors. 2015; 8:582. https://doi.org/10.1186/s13071-015-1181-y
  22. Vignon M, Pariselle A, Vanhove MPM. Modulatory in attachment organs of African Cichlidogyrus (Platyhelminthes: Monogenea: Ancyrocephalidae) reflects phylogeny rather tan host specificity or geografic distribution. Biol J Linn Soc. 2011; 102:694-706. https://doi.org/10.1111/j.1095-8312.2010.01607.x
  23. Ojwala RA, Otachi EO, Kitaka NK. Effect of water quality on the parasite assemblages infecting Nile tilapia in selected fish farms in Nakuru County, Kenya. Parasitol Res. 2018; 117(11):3459-3471. https://doi.org/10.1007/s00436-018-6042-0
  24. Akoll P, Fioravanti ML, Konecny R, Schiemer F. Infection dynamics of Cichlidogyrus tilapiae and C. sclerosus (Monogenea, Ancyrocephalinae) in Nile tilapia (Oreochromis niloticus L) from Uganda. J Helminthol. 2011; 86(3):302-310. https://doi.org/10.1017/S0022149X11000411
  25. Ibrahim MM. Variation in parasite infracommunies of Tilapia zillii in relation to some biotic and abiotic factors. Int J Zool. 2012; 8(2):59-70. https://doi.org/10.3923/ijzr.2012.59.70
  26. Paredes-Trujillo A, Velázquez-Abunader I, Papiol V, del Rio-Rodríguez RE, Vidal-Martínez VM. Negative effect of ectoparasite burdens on the condition factor from farmed tilapia Oreochromis niloticus in the Yucatan, Mexico. Vet Parasitol. 2021; 292:109393. https://www.doi.org/10.1016/j.vetpar.2021.109393
  27. Igeh PC, Avenant-Oldewage A. Pathological effects of Cichlidogyrus philander Douëllou, 1993 (Monogenea, Ancyrocephalidae) on the gills of Pseudocrenilabrus philander (Weber, 1897) (Cichlidae). J Fish Dis. 2020; 43(2):177–184. https://www.doi.org/10.1111/jfd.13121
  28. Martins ML, Cardoso L, Marchiori N, Benites de Pádua S. Protozoan infections in farmed fish from Brazil: diagnosis and pathogenesis. Rev. Bras Parasitol Vet. 2015; 24(1):1–20. https://doi.org/10.1590/S1984-29612015013
  29. El-Mansy A, Hamada S, Hasan S, El-Sarnagawy D. Histopathology of farmed freshwater fish infested with different helminthes. Egypt J Aquat Biol & Fish. 2011; 15(1):1-13. https://doi.org/10.21608/EJABF.2011.2072
  30. Alim DIM, Matter HMA. Histopathological alteration induced in gills of juvenile Nile tilapia Oreochromis niloticus upon exposure to two bio-pesticides. Int J Fish Aquat. Stud. 2015; 2(5):80–83. https://www. fisheriesjournal.com/archives/?year=201 5&vol=2&issue=5&part=B&ArticleId=454

Sistema OJS 3.4.0.3 - Metabiblioteca |