Búsqueda de Hantavirus y Arenavirus en roedores de Villavicencio, Colombia

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Andrés Camilo Rojas-Gulloso
Liliana Sánchez-Lerma
Duván Fuentes-Ramírez
Diego Alejandro Chinchilla-Acosta
Verónica Contreras-Cogollo
Salim Mattar-Velilla
Resumen

Objetivo. Realizar una búsqueda de Hantavirus y Arenavirus en pequeños roedores y establecer su distribución espacial en diferentes ecosistemas del municipio de Villavicencio, departamento del Meta, Colombia. Materiales y método. Se realizó un estudio descriptivo de corte transversal, entre octubre de 2018 octubre de 2019 en zonas periurbanas y rurales del municipio de Villavicencio. Se capturaron roedores empleando trampas tipo Sherman. La detección molecular de Hantavirus se llevó a cabo usando cebadores forward SAHN-S y reverse SAHN-C y para Arenavirus cebadores forward GP878+ y reverse GP1126.  Resultados. Un total de 50 roedores fueron capturados, el éxito de captura fue del 1.7%. Los roedores capturados pertenecían a 3 familias y 6 especies, las familias más frecuentes fueron Muridae (76%) Cricetidae (22%) y Echimydae (2%). Todas las muestras resultaron negativas para Hantavirus y Arenavirus. Conclusión. El estudio de pequeños roedores contribuye con la vigilancia de enfermedades transmitidas por estos mamíferos que actúan como reservorios.

Palabras clave

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Biografía del autor/a / Ver

Andrés Camilo Rojas-Gulloso, Universidad Cooperativa de Colombia

Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Medicina Laboratorio de Biología Molecular, Centro de Investigación en Salud Para el Trópico (CIST), 410001-Santa Marta, Colombia.

Liliana Sánchez-Lerma, Universidad Cooperativa de Colombia

Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Medicina, Grupo de Investigación de Villavicencio (GRIVI), 500002-Villavicencio, Colombia.

Duván Fuentes-Ramírez, Universidad Cooperativa de Colombia

Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Medicina, Grupo de Investigación de Villavicencio (GRIVI), 500002-Villavicencio, Colombia.

Diego Alejandro Chinchilla-Acosta, Universidad Cooperativa de Colombia

Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Medicina, Grupo de Investigación de Villavicencio (GRIVI), 500002-Villavicencio, Colombia.

Verónica Contreras-Cogollo, Universidad de Córdoba, Colombia

Universidad de Córdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Instituto de Investigaciones Biológicas del Trópico (IIBT), 230002-Berastegui, Colombia.

Salim Mattar-Velilla, Universidad de Córdoba, Colombia

Universidad de Córdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Instituto de Investigaciones Biológicas del Trópico (IIBT), 230002-Berastegui, Colombia.

Referencias / Ver

Han B, Kramer A, Drake J. Global Patterns of Zoonotic Disease in Mammals. Trends Parasitol. 2016; 32(7):565-577. https://doi.org/10.1016/j.pt.2016.04.007

Blanco P, Corrales H, Arroyo S, Perez J, Álvarez L, Castelar A. Comunidad de roedores en el municipio de san marcos, sucre, colombia. Rev Colombiana Cienc Anim. Recia. 2012; 4(1):89-101. https://doi.org/10.24188/recia.v4.n1.2012.278

Villalobos D, Ramírez JD, Chacón E, Pineda W, Rodríguez B. Clave para la identificación de los roedores de Costa Rica. Primera Ed. Costa Rica: Universidad de Costa Rica; 2016.46. https://www.academia.edu/29882897/Clave_para_la_identificaci%C3%B3n_de_los_roedores_de_Costa_Rica

Picco N, Martin V, Motta C. Determinación de bacterias zoonóticas transmitidas por roedores. Argentina; 2015. Ed Académica española. http://dx.doi.org/10.13140/RG.2.1.4241.2969

Bordes F, Blasdell K, Morand S. Transmission ecology of rodent-borne diseases: New frontiers. Integrative zoology. septiembre de 2015;10(5):424-35. https://doi.org/10.1111/1749-4877.12149

Vélez F, Pérez J. Remoción de semillas por roedores en un fragmento de bosque seco tropical (Risaralda-Colombia). Rev MVZ Córdoba. 2010; 15(3):2223-33. https://revistamvz.unicordoba.edu.co/article/view/309

Ministerio de salud y protección social. Manual para el control integral de roedores. Colombia; 2012 p. 1-82. https://www.minsalud.gov.co/sites/rid/Lists/BibliotecaDigital/RIDE/VS/PP/SA/manual-integral-de-roedores.pdf

Acero M. Zoonosis y otros problemas de salud pública relacionados con los animales: reflexiones a propósito de sus aproximaciones teóricas y metodológicas. Rev. Gerenc. Polít. Salud. 2016; 15 (31): 232-245. http://dx.doi.org/10.11144/Javeriana.rgyps15-31

Cortez V, Canal E, Dupont JC, Quevedo T, Albujar C, Chang T-C, et al. Identification of Leptospira and Bartonella among rodents collected across a habitat disturbance gradient along the Inter-Oceanic Highway in the southern Amazon Basin of Peru. PloS one. 2018;13(10):e0205068. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30300359/

Montoya C, Diaz F, Rodas J. Recent evidence of hantavirus circulation in the American tropic. Viruses. 2014;6(3):1274-93. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24638203

Sánchez L. Dengue, leptospirosis, hantavirosis y rickettsiosis en pacientes con síndrome febril agudo no palúdico en el meta, Colombia (2013-2014). Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí; 2017. http://tesis.sld.cu/index.php?P=BrowseResources&ID=3096

Mattar S, Guzmán C, Calderón A, González M. Infecciones por arenavirus. Revista MVZ Córdoba. 2017;22(supl): 6089-6100. http://dx.doi.org/10.21897/rmvz.1078

Guzmán C, Calderón A, González M, Mattar S. Infecciones por hantavirus. Rev MVZ Córdoba. 2017;22(supl): 6101-17. http://dx.doi.org/10.21897/rmvz.1079

Calderon A, Guzman C, Salazar J, Figueiredo L, Mattar S. Viral Zoonoses That Fly with Bats: A Review. Journal of Parasite Biodiversity.2016;6:1-9. https://digitalcommons.unl.edu/manter/7

Hay S, Battle K, Pigott D, Smith D, Moyes C, Bhatt S et al. Global mapping of infectious disease. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2013;368(1614):20120250. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23382431

Mills J, Childs J, Ksiasek T, Peters C. Métodos para trampeo y muestreo de pequeños mamíferos para estudios virológicos [Internet]. CDC. Center for Disease Control and Prevention. Atlanta, GA; 1998. 1-65. Disponible en: https://stacks.cdc.gov/view/cdc/11583

Moreli M, Moro De Sousa R, Figueiredo L. Detection of Brazilian hantavirus by reverse transcription polymerase chain reaction amplification of N gene in patients with hantavirus cardiopulmonary syndrome. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2004;99(6):633-8. https://doi.org/10.1590/s0074-02762004000600018

Delgado S, Erickson B, Agudo R, Blair P, Vallejo E, Albariño C, et al. Chapare virus, a newly discovered arenavirus isolated from a fatal hemorrhagic fever case in Bolivia. PLoS Pathogens. 2008;4(4):1-6. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1000047

Di Rienzo J, Casanoves F, Balzarini M, Gonzalez L, Tablada M, Robledo C. InfoStat [Internet]. versión 24. Córdoba, Argentina: Universidad Nacional de Córdoba; 2011. http://www.infostat.com.ar/

ICLAS. Principios rectores internacionales para investigación biomédica con animales [Internet]. 2012 p. 1. http://www.cioms.ch/index.php/12-newsflash/227-cioms-and-iclas-release-the-new-international-guiding-principles-for-biomedical-research-involving-animals

Murray KA, Daszak P. Human ecology in pathogenic landscapes: Two hypotheses on how land use change drives viral emergence. Curr opin virol. 2013 3(1):79-83. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3713401/

Guzmán C, Mattar S, Calderón A. Diversidad de roedores, hantavirus y su relación con la salud pública. Salud Uninorte. 2015;31(3):554-98. https://doi.org/10.14482/SUN.31.3.567

Wiethoelter A, Beltrán-Alcrudo D, Kock R, Mor S. Global trends in infectious diseases at the wildlife-livestock interface. PNAS. 2015; 112(31):9662-7. https://doi.org/10.1073/pnas.1422741112

Vieira A, Di Azevedo M, D’Andrea P, do Val Vilela R, Lilenbaum W. Neotropical wild rodents Akodon and Oligoryzomys (Cricetidae: Sigmodontinae) as important carriers of pathogenic renal Leptospira in the Atlantic forest, in Brazil. Res Vet Sci. 2019; 124:280-3. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2019.04.001

Ernesto J, Levis S, Pini N, Polop J, Steinmann A, Provensal M. Mechanisms of Hantavirus Transmission in Oligoryzomys longicaudatus. EcoHealth. 2019; 16(4):671-81. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31792647/

Fernandes J, de Oliveira R, Guterres A, Barreto-Vieira D, Terças A, Teixeira B, et al. Detection of Latino virus (Arenaviridae: Mammarenavirus) naturally infecting Calomys callidus. Acta Trop. 2018; 179:17-24. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2017.12.003

Castellar A, Guevara M, Rodas J, Londoño A, Arroyave E, Díaz F, et al. Primera evidencia de infección por el virus de la coriomeningitis linfocítica (arenavirus) en roedores Mus musculus capturados en la zona urbana del municipio de Sincelejo, Sucre, Colombia. Biomedica. 2017; 37(Supl.1):75-85. https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/3226

Montoya C, Cajimat M, Milazzo M, Diaz F, Rodas J, Valbuena G, et al. Phylogenetic Relationship of Necoclí Virus to Other South American Hantaviruses (Bunyaviridae: Hantavirus). Vector Borne Zoonotic Dis. 2015; 15(7):438-45. https://doi.org/10.1089/vbz.2014.1739

Mattar S, Guzman C, Arrazola J, Soto E, Barrios J, Pini N, et al. Antibody to arenaviruses in rodents, Caribbean Colombia. Emerg infect Dis. 2011; 17(7):1315-7. https://dx.doi.org/10.3201%2Feid1707.101961

Sánchez L, Mattar S, Rodriguez D, Tíque V, Rodriguez I. First serological evidence of hantavirus infection in humans from the Orinoquia region of Colombia. Braz J Infect Dis. 2016; 20(5):507-8. https://doi.org/10.1016/j.bjid.2016.05.006

Citado por