Papilomavirus bovino tipo 2 en un sarcoide equino en Costa Rica
Papillomavirus type 2 in an equine sarcoid in Costa Rica
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Objetivo: Identificar mediante técnicas moleculares la presencia de papilomavirus bovino (BPV) en un sarcoide equino, y realizar la caracterización histológica de este. Materiales y métodos: A partir de lesiones de sarcoide en una yegua de raza pinto americano se realizó la extracción de ácidos nucleicos para su identificación mediante técnicas moleculares. Se amplificó el gen correspondiente al segmento L1 para papilomavirus a través de reacción en cadena de la polimerasa, se secuenció y luego fue analizado utilizando el algoritmo BLAST. Se realizó tinción de hematoxilina-eosina del tejido y se analizó en microscopio de luz 100X. Resultados: Se detectó BPV-2 en la lesión de sarcoide equino; el sarcoide se clasificó como nodular de acuerdo con sus características morfológicas e histológicas. La histopatología mostró una lesión fibrótica, con neoplasia exofítica y expansión del estrato espinoso. Conclusiones: El estudio demostró por primera vez la presencia de BPV-2 en un sarcoide equino en Costa Rica utilizando técnicas moleculares y su asociación con un sarcoide de tipo nodular.
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- Wobecer BK, Davies JL, Hill JE, Jackson ML, Kidney BA, Mayer MN, Townsend HG, Allen AL. Epidemiology of equine sarcoide in horses in western Canada. Can Vet J. 2010; 51(10):1103-1108. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21197201/
- Bogaert L, Martens A, De Baere C, Gasthuys F. Detection of bovine paillomavirus DNA on the normal skin and in the habitual surroundings of horses with and withou equine sarcoids. Res Vet Sci. 2005; 79(3):253-258. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2004.12.003
- Bogaert L, Van Poucke M, De Baere C, Dewulf J, Peelman L, Ducatelle R, Gasthuys F, Martens A. Bovine papillomavirus load and mRNA expression, cell proliferation and p53 expression in four clinical type of equine sarcoide. J Gen Virol. 2007; 88(Pt 8):2155-2161. https://doi.org/10.1099/vir.0.82876-0
- Chambers G, Ellsmore VA, O´Brien M, Reid SW, Love S, Campo MS, Nasir L. Association of bovine papillomavirus with the equine sarcoide. J Gen Virol. 2003; 84(5):1055-1062. https://doi.org/10.1099/vir.0.18947-0
- Knottenbelt DC. A Suggested Clinical Classification for the equine sarcoide. Clin Tech Equine Pract. 2005; 4(4):278-295. https://doi.org/10.1053/j.ctep.2005.10.008
- Wobeser BK. Making the Diagnosis: Equine Sarcoid. Vet Pathol. 2017; 54(1):9-10. https://doi.org/10.1177/0300985816664793
- Lunardi M, Kussumoto B, Arellano RA, Borges W, Fernandes A, Alcindo A. Bovine Papillomavirus Type 13 DNA in Equine Sarcoids. J Clin Microbiol. 2013; 51(7):2167-2171. https://doi.org/10.1128/JCM.00371-13
- de Alcântara BK, Alfieri AA, Headley SA, Rodrigues WB, Otonel R, Lunardi M, Alfieri AF. Molecular characterization of bovine Deltapapillomavirus (BPV1, 2, and 13) DNA in equine sarcoids. Pesq Vet Bras. 2015; 35(4):431-436. https://doi.org/10.1590/S0100-736X2015000500007
- Vindas R, Villagra R, Vargas J, Jiménez C, Marín R, Rodríguez H, Estrada M. Tratamiento de sarcoide equino: Reporte de cuatro casos clínicos. Rev Ciencias Veterinarias. 2015; 31(2):59-68. https://www.revistas.una.ac.cr/index.php/veterinaria/article/view/6863/7035
- Araldi RP, Carvalho RF, Melo TC, Diniz NS, Sant´Ana TA, Mazzuchelli-de-Souza J, Spadacci-Morena DD, Beçak W, Stocco RC. Bovine papillomavirus in beef cattle: first description of BPV-12 and putative type BAPV8 in Brazil. Genet Mol Res. 2014; 13(3):5644-5653. https://doi.org/10.4238/2014.July.25.20
- Roperto S, Brun R, Paolini f, Urrro C, Russo V, Borzacchiello G, Pagnini U, Raso C, Rizzo C, Roperto F, Venuti A. Detection of bovine papillomavirus type 2 in the peripheral blood of cattle with urinary bladder tumours: possible biological role. J Gen Virol. 2008; 89(Pt 12):3027-3033. https://doi.org/10.1099/vir.0.2008/004457-0
- Williams JH, Van E, Nel PJ, Lane, E, Van E, Bengis R, et al. Pathology and inmunohistochemistry of papillomavirus-associated cutaneous lesions in Cape mountain zebras, giraffe, sable antelope and African buffalo in South Africa. JI S. Afr Vet Ass. 2011; 82(2):7-106. https://doi.org/10.4102/jsava.v82i2.42
- Martens A, De Moor A, Demeulemeester J, Ducatelle R. Histopathological characteristics of fice clinical types of equine sarcoide. Res Vet Sci. 2000; 69:295-300. https://doi.org/10.1053/rvsc.2000.0432
- Taylor S, Haldorson G. A review of equine sarcoid. Equine Vet. Educ. 2013; 25(4): 210-216. https://doi.org/10.1111/j.2042-3292.2012.00411.x
- Bogaert L, Marten A, Kast WM, Van ME, De CoCK H. Bovine papillomavirus DNA can be detected in keratinocytes of sarcoid tumors. Vet Microbiol. 2010. 146(3-4):269-275. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2010.05.032
- Wobecer BK, Hill J, Jackson M, Kidney B, Mayer M, Townsed H, et al. Localization of Bovine papillomavirus in equine sarcoids and inflamamatory skin condition of horses using laser microdissection and two forms of DNA amplification. J Vet Diagn Invest. 2012; 24(1):32-41. https://doi.org/10.1177/1040638711425952