Cultivo experimental del cladocero Moina sp alimentado con Ankistrodesmus sp y Saccharomyces cereviseae

Cultivo experimental del cladocero Moina sp alimentado con Ankistrodesmus sp y Saccharomyces cereviseae

Published 2006-01-01

Open | Download
PDF (Spanish) FLIP
How to Cite
Prieto, M., De la Cruz, L., & Morales, M. (2006). Cultivo experimental del cladocero Moina sp alimentado con Ankistrodesmus sp y Saccharomyces cereviseae. Journal MVZ Cordoba, 11(1). https://doi.org/10.21897/rmvz.455
doi

https://doi.org/10.21897/rmvz.455
Dimensions
PlumX
Martha Prieto
Litia De la Cruz
Mario Morales
Show authors biography

Martha Prieto

Universidad de Córdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Ciencias Acuícolas

Litia De la Cruz

Universidad de Córdoba, Departamento de Ciencias Acuícolas, Programa de Acuicultura

Mario Morales

Universidad de Córdoba, Facultad de Ciencias Básicas, Departamento de Matemáticas y Estadística
Objetivo. Realizar un cultivo experimental de cladócero Moina sp alimentado con Ankistrodesmus sp y Saccharomyces cereviseae. Materiales y métodos. Fueron realizados cultivos experimentales de la cepa de cladóceros Moina sp en el laboratorio de Alimento Vivo de la Universidad de Córdoba, bajo condiciones controladas de temperatura (22oC), pH (7.6), intensidad lumínica (2000 lux) y aireación. Se emplearon dos dietas de alimento como tratamiento (Ankistrodesmus y Ankistrodesmus mas Saccharomyces cereviseae) en concentración de 40 x 105 cel.ml-1 cada uno, para determinar su efecto sobre el desempeño de la población. Diariamente se registró la densidad poblacional y celular. Resultados. Se obtuvieron diferencias significativas para el efecto de las dietas sobre el crecimiento poblacional de los cladóceros, los individuos alimentados con Ankistrodesmus sp + Saccharomyces cereviseae alcanzaron una densidad de 12.3a ±0.30 org/ml- 1 presentando mayor tasa instantánea de crecimiento (K) 0.36 ± 0.002, el menor tiempo de duplicación (td) 1.94 ± 0.012 y el mayor rendimiento (r) 1,1 ± 0.07 clad.ml-1.día-1. Conclusión. Los cladóceros por sus características de crecimiento en cultivo, presentan adaptación favorable a las condiciones de manejo para la producción de biomasas potencialmente útiles como partícula nutritiva con fines acuícolas.

Article visits 2108 | PDF visits

Downloads

Download data is not yet available.
  1. Lavens P, Sorgeloos P. Introduction. In: (eds). Manual on the production and use of life food for aquaculture. FAO Fisheries technical paper No. 361. Rome: FAO, 1996; Cap. 1, p.1-6.
  3. Wedler E. Introducción en la Acuicultura con énfasis en los Neotrópicos. 1ra. Edición. 1998; Santa Marta Colombia, 388p.
  5. Atencio V. Influencia da primeira alimentação na alevinagem do Yamú Brycon siebenthalae (EIGENMANN,1912). Florianópolis, Brasil, 2000. 130p. Trabajo de grado (Maestria en Acuicultura). Universidad Federal de Santa Catarina. Centro de Ciencias Agrarias. Departamento de Aquicultura.
  7. Prieto M. Aspectos reproductivos y pautas para el cultivo de Moinodaphnia sp (Crustacea:cladocera) cepa Ciénaga de Lorica, en condiciones de Laboratorio. Universidad del Magdalena, Instituto de Postgrado. Santa Marta, Magdalena, 2000.
  9. Cura E. Contibución a la evaluación limnológica de la Ciénaga de Momil. Departamento de Córdoba. Rev Temas Agrarios 1997; 2:12-15.
  11. Montealegre D. Historia de vida de Moinodahnia macleayii (King) (Crustacea: Cladocera) en condiones de Laboratorio. Tesis Biologia Marina. Universidad Jorge Tadeo Lozano. Bogotá Colombia. 1996; 136p.
  13. Kerguelen E. Influencia de la primera Alimentación en el desempe-o de la larvicultura del Bocachico (Prochilodus magdalenae. Steinchdachner, 1978). Montería, 2001. Trabajo de grado (Acuicultor) Universidad de Córdoba. Facultad de M.V.Z. Departamento de Acuicultura Montería Colombia. 65p
  15. Sipaúba-Tavares L. Análise da seletividade alimentar em larvas de tambaqui (Colossoma macropomum) e tambacu (híbrido, pacu - Piaractus mesopotamicus - e tambaqui - Colossoma macropomum) sobre os organismos aquáticos. Acta Limnológica Brasileira 1993; 6:114-1132.
  17. Fragadolli C. Estudo comparativo do comportamento alimentar de larvas de pacu Piaractus mesopotamicus (Holmberg, 1887) e Tambaqui Colossoma macropomum (Cuvier,1818) em laboratório. 1990. Dissertação (Mestrado em Produção aquática) - Universidade Federal da Bahia, Salvador BA.
  19. Pelli A, Dumont-Neto R, Silva J, Gonçalves S, Souza D, Barbosa N. Início de ingestão de ração por pacú ( Piaractus mesopotamicus, Holmberg, 1887), curimba (Prochilodus scrofa Steinchdachner, 1881) e piau (Leporinus friderici, Bloch, 1794). Em condições de criação semi-intensiva. In: Simpósio Brasileiro de Aquicultura 9 1996, Sete Lagoas. Resumos. Sete Lagoas: ABRAQ 1996. 88p.
  21. Atencio V, Evoy Zaniboni-Filho, Pardo S, Arias A. Influência da primerira alimentação na larvicultura e alevinagem do yamú Brycon siebenthalae (Characidae). Acta Scientiarum Anim Sci Maringá 2003; 25:61-72.
  23. Wiwattanapatapee R, Padoongsombat N, Choochon T, Tang S, Chaimongkol A. Water flea Moina macropopa as novel biocarrier of norffloxacin in aquaculture. J of controlled Release 2002; 83:23-28. http://dx.doi.org/10.1016/S0168-3659(02)00173-6
  25. Sipaúba –Tavares L, Rocha O. Produção de plâncton (Fitoplâncton e Zooplâncton) para alimentação de organismos aquáticos. São Carlos: RIMA, 2003. 106p.
  27. Zimmermann S, Jost H. Recentes Avanços na Nutrição de Peixes: a Nutrição por Fases em Piscicultura Intensiva. In: Simpósio sobre manejo e nutriçào de peixes 2. 1998, Piracicaba. Anais Piracicaba- SP, 1998. p.123-162.
  29. Rottman R. Técnicas de la cultura de Moina: El daphnia ideal para alimentar peces de agua dulce. Rev Biol 1999; 601.
  31. Ferraào-Filho A, Fileto C, Lopes N, Arcifa M. Effects of essential fatty acids and N and P-limited algae on the growth rate of tropical cladocerans. Freshwater Biology 2003; 48:759-767. http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-2427.2003.01048.x
  32. Martínez J, Villase-or R, Rios G, Espinosa F. Effect of food type and concentration on the survical. Longevity, and reproduction of Daphnia magna. Hydrobiology 1994; 287:207-214. http://dx.doi.org/10.1007/BF00010735
  34. Lemke A, Benke A. Growth and reproduction of three cladoceran species from a small wetland in the south-eastern U.S.A. Freshwater Biology 2003; 48:589-603. http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-2427.2003.01034.x
  36. Barnabe G. Bases Biologicas y ecológicas de la Acuicultura. Editorial Acribia. Zaragoza – Espa-a. 1996; 519p.
  38. Prieto G, Mogollon M, Castro A, Sierra L. Efecto del medio y condiciones de cultivo en la productividad de tres diatomeas marinas con potencial acuícola. Rev MVZ Córdoba 2005; 10:544-554.
  40. Paniagua J, Buckles F, Granados C, Loya D. Manual de metodologías y alternativas para el cultivo de microalgas. CICESE. México. 1986; 93p.
  42. González de Infante A. El Plancton de las aguas continentales. Secretaria general de la O.E.A. Serie de Biología. 1988; Monografía No. 33 Washington D.C.
  44. Becker E. (Ed). Biotechnology and microbiology. Cambridge university press, Cambridge. 1994; 293p.
  46. Pelczar M, Reid R. Microbiología. Cuarta Edición. 1993; México.
  48. Espinosa F, Martínez J, Ramírez R. Filtration rate and culture of moina macrocopa (crustacea: cladocera) fed with scenedesmus incrassatulas (crlorophyceae) and digested cow manure. Anales del Instituto de Ciencias del Mar y Limnología 1992; 2:54-59.
  50. Yufera M, Pascual E. Estudio del rendimiento de cultivos del rotífero B. Plicatilis O. F Müller alimentados con levadura de panificación. 1980. Inv Pesq 44:361-368p.
  52. Malhotra Y, Langers S. Culture of Moína macropa, a food orgaanism for fish larvae in different nutrient media. En: Agrawal VP, Das P. (ed) Recent trends in Limnology. Muzaffarnager India Society of Bioscienccces 1990 (a); 485p.
  54. Prieto M. Enriquecimiento de Zooplâncton com óleo de peixe na larvicultura de Pacu, Piaractus mesopotamicus e Curimbatá, Prochilodus lineatus. Lavras: UFLA, 2003. 106 p. Dissertação Mestrado- UFLA, Brasil.
  56. Aloyso S, Ferra O, Fileto C, Norberto P, Lopes M, Arcifa M. Effects of essential fatty acids and N and P-limited algae on the growth rate of tropical cladocerans. Freshwater Biology 2003; 48:759–767. http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-2427.2003.01048.x
  58. Pagano M, Saint-Jean L, Arfi R, Bouvy M, Shep H. Population growth capacities and regulatory factors in monospecific cultures of the cladocerans Moina micrura and Diaphanosoma excisum and the copepod thermocyclops from Côte d'Ivoire (West Africa). Aquat Living Resour 2000; 13:163- 172. http://dx.doi.org/10.1016/S0990-7440(00)00152-2
  60. Bonou C, Saint-Jean L. The regulation mechanisms and yield of brackish water populations of Moina micrura reared in tanks. Aquaculture 1998; 160:67-79. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(97)00224-X
  62. Adeymo A, Oladosu G, Ayinla A. Growth and survival of fry of African catfish species, Clareas gariepinus Burchell, Heterobranchus bidorsalis Geoffrey and Heteroclareas reared on Moina dubia in comparison with other first feed sources. Aquaculture 1994; 119:41-45. http://dx.doi.org/10.1016/0044-8486(94)90442-1
  64. Lopes C, Theis S. Demography of population of Moina micrura Kurz (Crustacea:Cladocera) in a temporary pond, peninsula of Paraguana, Venezuela. Int Ver Ges Hydrobiol 1997; 82:341-350. http://dx.doi.org/10.1002/iroh.19970820307
  66. Rispe C, Pierre J. Coexistence between Cyclical Parthenogens Obligate Parthenogens and Intermediates in a Fluctuating Environment. Journal of Freswater Biology 1998; 195:97-110. http://dx.doi.org/10.1006/jtbi.1998.0784
  68. Kleiven O, Larson P, Hoback A. Sexual reprodution in Daphinia magna requires 3 stimuli. Oikos. 1992; 65:197-206. http://dx.doi.org/10.2307/3545010
  70. Malhotra Y, Langers S. Biologycal aspcts of Moina macropa in relation to temperature variations. 1990 (b). Journal of Freswater Biology 2:111-115.
  72. Crosetti D, Margaritora F. Distribution and life cycles of cladocerans in temporary pools from Central Italy. 1987. Journal of Freswater Biology 18:165-175 http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2427.1987.tb01304.x
  74. Davis P, Ozburn G. The pH tolerance of Daphnia pulex (Leydig Emend Richard). Can J Zool 1969; 47:1173-1175. http://dx.doi.org/10.1139/z69-181
  76. Conklin D, Provasoli L. Bifhasic particulate media for the culture of filter-feeders. Biol Bull 1978; 154:47-54. http://dx.doi.org/10.2307/1540773
  78. Ramírez E, Sarma S, Nadini S. Combined effects of algas (Chlorella vulgaris) density and ammonia concentration on the population dynamics of Ceriodaphinia dubia and Moina macrocopa (cladocera). Ecotoxicology and Environmental Safety 2002; 51:216-222. http://dx.doi.org/10.1006/eesa.2001.2128
  80. Fermín A, Seronay G. Effects of different illumination levels on zooplakton abundace, feeding periodicity, growth and survival of the Asian sea bass, Lates calcarifer (Bloch), and fry in illuminated floating nursery cages. Aquaculture1997; 157:227-237 http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(97)00167-1

Information

SCImago Journal & Country Rank

0.6
2020CiteScore
 
 
28th percentile
Powered by  Scopus
Redib Widget
Tutorials

Autors:

How send article?

Evaluator pair

How to evaluate an article?

Keywords

QR code

Current Issue

Perfil de Google Scholar

Most read in the last 30 days

Sistema OJS 3.4.0.3 - Metabiblioteca |