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SEROTIPIA, RESISTENCIA A ANTIMICROBIANOS Y PERFILES PLASMÍDICOS DE BACTERIAS ENTEROPATOGENAS AISLADAS DE PROCESOS DIARREICOS DE COLOMBIA

SEROTIPIA, RESISTENCIA A ANTIMICROBIANOS Y PERFILES PLASMÍDICOS DE BACTERIAS ENTEROPATOGENAS AISLADAS DE PROCESOS DIARREICOS DE COLOMBIA



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How to Cite
Vergara, C., Visbal, J., & Mattar, S. (2002). SEROTIPIA, RESISTENCIA A ANTIMICROBIANOS Y PERFILES PLASMÍDICOS DE BACTERIAS ENTEROPATOGENAS AISLADAS DE PROCESOS DIARREICOS DE COLOMBIA. Journal MVZ Cordoba, 7(2). https://doi.org/10.21897/rmvz.523

Dimensions
PlumX
Claudia Vergara
Jorge Visbal
Salim Mattar

Se analizaron 107 cepas provenientes de diferentes regiones de Colombia de brotes diarreicos de pacientes pediátricos distribuidas de la siguiente forma: 50 aislamientos de Escherichia coli enteropatógeno (ECEP), 44 de Salmonella sp y 13 de Shigella sp. Los serotipos de ECEP más frecuentemente aislados correspondieron a 0:111, 0:127, 0:124, 0:55 y 0:119. La susceptibilidad a los antimicrobianos se realizó empleando la técnica Bauer & Kirby. Los resultados mostraron que las cepas de ECEP fueron resistentes a ampicilina, trimetoprim-sulfametoxazole y tetraciclina. Las cepas de Salmonella sp fueron resistentes a todos los antimicrobianos empleados incluyendo cloranfenicol, las cepas de Shigella sp mostraron solamente susceptibilidad frente a furazolidona. El análisis plasmídico demostró que todas las cepas de ECEP presentaron plásmidos con pesos moleculares entre 4.2 y 21.2 Kb. En las cepas de Salmonella sp se observaron 2 perfiles con 1 y 4 plásmidos de pesos moleculares entre 1.6 y 21.2 Kb. En las cepas de Shigella sp se observaron 3 perfiles con 3,4 y 5 plásmidos con pesos moleculares aproximados entre 1.2 y 21.2 Kb. Salmonella sp mostró perfiles de 1 y 4 plásmidos, mientras que los perfiles de Shigella sp revelaron la presencia de mayor número de plásmidos con tamaños menores. El plásmido de 21.2 Kb aislado en cepas de ECEP, Salmonella sp y Shigella sp podría ser utilizado como marcador epidemiológico de la EDA en Colombia.

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  1. Bernier C, Gounon P, Le Bouguenea C. Identification of an aggregative adhesion fimbria (AFF) type III-encoding operon in enteroaggregative Escherichia coli as a sensitive probe for detecting the AAF-encoding operon family. Infect Immun. 2002; 70: 4302-11. http://dx.doi.org/10.1128/IAI.70.8.4302-4311.2002
  2. Brian M.J, Van R, Townsend I, Murray B.E, Cleary T.G and Pickering L.K. Evaluation of the molecular epidemiology of an outbreak of multiply resistant Shigella sonnei in a day care center by using pulsed-field gel electrophoresis and plasmid DNA analysis. J Clin Microbiol. 1993; 31:2152-2156.
  3. Chu C, Chru CH, Wu WY, Chu CH, Liu TP, Ou JT. Large drug resistance virulence plasmids of clinical isolates of Salmonella enterica serovar Cholerasuis. Antimicrob Agents Chemother. 2001; 45: 2299-303. http://dx.doi.org/10.1128/AAC.45.8.2299-2303.2001
  4. Doughty S, Sloan J, Bennet-Wood V, Robertson M, Robins-Browne RM, Hartland EL. Identification of a novel fimbrial gene cluster related to long polar fimbriae in locus of enterocyte effacement-negative strains of enterohemorrhagic Escherichis coli. Infect Immun. 2002; 70:6761-9. http://dx.doi.org/10.1128/IAI.70.12.6761-6769.2002
  5. Faruque SM, Khan R, Kamiruzzaman M, Yamasaki S, Ahmad QS; Azim T, Nair GB, Takeda Y, Sack DA. Isolation of Shiguella dysenteriae type I and Shiguella flexneri strains from surface waters in Bangladesh: comparative molecular analysis of enviromental isolates versus clinical strains. Appl Envirom Microbiol. 2002; 68:3908-13 http://dx.doi.org/10.1128/AEM.68.8.3908-3913.2002
  6. Herrera S, Cabrera R, Ramirez MM, Usera MA, Echeita MA. Use of AFLP, plasmid typing and phenotyping in a comparative study to asses genetic diversity of Shigella flexneri strains. Epidemiol Infect. 2002; 129:445-50. http://dx.doi.org/10.1017/S0950268802007562
  7. Lujan R, Echeita A, Usera M.A, Martínez-Suárez J.V, Alonso R, Sanz-Nieto A. Plasmid profiles as an aepidemiological marker for Salmonella enterica serotype enteritidis foodborne outbreaks. Microbiol SEM. 1990; 6:45-50.
  8. Luque A, Mori-igo M.A, Rodríguez-Avial C, Picazo J.J y Borrego J.J. Resistencias a antimicrobianos y presencia de plásmidos en cepas de Salmonella aisladas de diferentes orígenes. Enferm Infecc Microbiol Clin. 1994; 12:187- 192.
  9. Marco F, Jiménez de Anta M.T. Métodos de tipificación: análisis de plásmidos:ventajas e inconvenientes. Enferm Infecc y Microbiol Clin. 1993; 11:97-101.
  10. Maslow J.N, Mulligan M.E and Arbert R.D. Molecular epidemiology application of contemporany techniques to the typing of microorganism. Clin Infect Dis. 1993; 17:153-164. http://dx.doi.org/10.1093/clinids/17.2.153
  11. Máttar S, Centella A, Daza C y García J. valoración de tres nuevos medios de cultivo:agar novobiocina-verde brillante-glicerol-lactosa,agar lisina-hierro modificado y agar Rambach para el aislamiento de E. coli enteropatógeno, Salmonella sp. y Shigella sp. en la gastroenteritis aguda. Enferm Infecc Microbiol Clin. 1994; 12:484-489.
  12. Máttar S, Escalante M, Vergara C.A. Síndrome diarréico bacteriano. En Infecciones Hospitalarias. Malagón-Londo-o & Hernández Esquivel. Edit Médica Panamericana, Bogotá, D.C. Colombia. 1995; 803-814.
  13. Maurelli A.T, Bandry B, D'hanteville H., Hale T.L and sansonetti P.J. Cloning of plasmid DNA sequences involved in invasion of Hela cells by Shigella flexneri. Infect Immun. 1985; 49:164-171.
  14. Mirza S.H and Hart C.A. Plasmid encoded multidrug resistance in Salmonella typhi from Pakistan. Ann Tropic Med Parasitol. 1993; 87:373- 377.
  15. Riley L.W, Cohen M.L, Seals J.E, Blaser M.J and Feldman R.A. Importance of host factors in human salmonellosis caused by multiresistant strins of Salmonella. J Infect Dis. 1984; 149:878-883. http://dx.doi.org/10.1093/infdis/149.6.878
  16. Rodrigue D.C, Cameron D.N, Puhr N.D, Brenner F.W, St Louis M.E and Tauxe R.V. Comparison of plasmid profiles, phage types and antimicrobial resistence patterns of Salmonella enteritidis isolates in the United States. J Clin Microbiol. 1992; 30:854-857.
  17. Sambrook J, Fritsch E.F, Maniatis T. Molecular cloning: a Laboratory manual 2a. Ed. Cold Spring Laboratory, Cold Spring Harbor, New York. 1989; 1:211,52.
  18. Sansonetti P.J, Ryter A, Cierc P, Maurelli A.T and Mounier J. Multiplication of Shigella flexneri within Hela cells; lysis of the phagocytic vacuole and plasmid-mediated contact hemolysis. Infect Immun. 1986; 51:461-469.
  19. Sasakawa C, Kamata K, Sakai T, Murayama S, Makino S and Yoshikawa M. Molecular alteration of the 140-megadalton plasmid associated with loss of virulence and congo red binding activity in Shigella flexneri. Infect Immun. 1986; 51:470- 475.
  20. Tacket C.O. Molecular epidemiology of Salmonella. Epidemiol Rev. 1989; 11:99-108.
  21. Tenover F.C. Plasmid Fingerprinting. A tool for bacterial strain identification and surveillance of nosocomial and community-adquired infections. Clin Lab Med. 1985; 5:413-436.
  22. Thornsberry C. Antimicrobial agents and susceptibility tests. In Manual of Clinical Microbiology fifth edition. Balows A, Hausler W.J, Herrmann K.L, Isenberg H.D and Shadomy H.J. 1991. American Society for Microbiology. Washington, D.C.
  23. Wachsmuth K. Molecular Epidemiology of Bacterial Infections: Examples of Methodology and of Investigations of Outbreaks. Rev Infect Dis. 1986; 8:682-692. http://dx.doi.org/10.1093/clinids/8.5.682
  24. Woodward M.J, mcLaren I, Wray G. Distribution of Virulence Plasmids within Salmonellae. J Gen Microbiol. 1989; 135:503-511. http://dx.doi.org/10.1099/00221287-135-3-503

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